| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略词 | 第11-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-16页 |
| 第二章 实验材料和方法 | 第16-26页 |
| 2.1 实验材料 | 第16-18页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第16页 |
| 2.1.2 实验试剂和干预药物 | 第16-17页 |
| 2.1.3 实验器材设备 | 第17-18页 |
| 2.1.4 试剂的配制 | 第18页 |
| 2.2 实验方法 | 第18-24页 |
| 2.2.1 动物分组 | 第18页 |
| 2.2.2 动物模型的制备 | 第18-19页 |
| 2.2.3 神经功能缺损评分 | 第19页 |
| 2.2.4 取材及标本的制作 | 第19页 |
| 2.2.5 免疫组化法测定血肿周围脑组织中Notch1和NF-κB P65的表达 | 第19-20页 |
| 2.2.6 Western Blot测定血肿周围脑组织中Notch1和NF-κB P65蛋白水平 | 第20-24页 |
| 2.3 结果观察与分析 | 第24-25页 |
| 2.3.1 神经功能缺损评分 | 第24页 |
| 2.3.2 免疫组化的结果判定 | 第24-25页 |
| 2.3.3 Western Blot的检测结果判定 | 第25页 |
| 2.4 统计学分析 | 第25-26页 |
| 第三章 结果 | 第26-31页 |
| 3.1 神经功能缺损评分 | 第26-27页 |
| 3.2 血肿周围脑组织中Notch1的表达 | 第27-29页 |
| 3.2.1 免疫组织化学方法检测Notch1的染色结果 | 第27页 |
| 3.2.2 Western Blot法检测Notch1蛋白表达的结果 | 第27-29页 |
| 3.3 血肿周围脑组织中NF-κB P65的表达 | 第29-31页 |
| 3.3.1 免疫组织化学方法检测NF-κB P65的染色结果 | 第29-30页 |
| 3.3.2 Western Blot法检测NF-κB P65蛋白表达的结果 | 第30-31页 |
| 第四章 讨论 | 第31-40页 |
| 4.1 大鼠脑出血模型的建立 | 第31-33页 |
| 4.2 脑出血后,大鼠的神经功能缺损及瑞舒伐他汀的干预作用 | 第33-35页 |
| 4.3 瑞舒伐他汀下调脑出血后脑组织中Notch1的表达 | 第35-36页 |
| 4.4 瑞舒伐他汀下调脑出血后脑组织中NF-κB的表达 | 第36-38页 |
| 4.5 Notch1与NF-κB之间的相互关系及瑞舒伐他汀的作用 | 第38-39页 |
| 4.6 总结 | 第39-40页 |
| 第五章 结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-49页 |
| 附图 | 第49-54页 |
| 综述 | 第54-68页 |
| 参考文献 | 第61-68页 |
| 攻读硕士学位期间所发表学术论文目录 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69页 |
