| 摘要 | 第4-8页 |
| Abstract | 第8-12页 |
| 英文缩略语 | 第13-19页 |
| 第一部分 ：溃疡性结肠炎患者肠道黏膜愈合与紧密连接蛋白表达关系的研究 | 第19-41页 |
| 1 前言 | 第19-20页 |
| 2 材料和方法 | 第20-28页 |
| 2.1 主要试剂和仪器 | 第20-21页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第20页 |
| 2.1.2 试剂和药品 | 第20-21页 |
| 2.2 研究对象和分组 | 第21-23页 |
| 2.2.1 研究对象和分组 | 第21页 |
| 2.2.2 纳入标准 | 第21页 |
| 2.2.3 排除标准 | 第21-23页 |
| 2.3 结肠组织学损伤评分 | 第23-25页 |
| 2.4 免疫组织化学法检测 | 第25-26页 |
| 2.5 Real-timePCR | 第26-27页 |
| 2.5.1 各组结肠组织总RNA的提取 | 第26页 |
| 2.5.2 反转录体系 | 第26页 |
| 2.5.3 聚合酶链式反应 | 第26-27页 |
| 2.6 统计学处理 | 第27-28页 |
| 3 结果 | 第28-38页 |
| 3.1 研究对象的基本情况 | 第28-29页 |
| 3.2 肠组织病理学改变与病理学评分 | 第29-33页 |
| 3.3 免疫组织化学结果 | 第33-36页 |
| 3.4 紧密连接蛋白与临床数据的相关性分析 | 第36页 |
| 3.5 紧密连接蛋白Real-timePCR结果 | 第36-38页 |
| 4 讨论 | 第38-40页 |
| 5 结论 | 第40-41页 |
| 第二部分 ：山姜素对溃疡性结肠炎小鼠保护作用的研究 | 第41-63页 |
| 6 前言 | 第41-42页 |
| 7 材料和方法 | 第42-47页 |
| 7.1 主要试剂和仪器 | 第42-43页 |
| 7.1.1 主要仪器 | 第42-43页 |
| 7.1.2 试剂和药品 | 第43页 |
| 7.2 实验动物和分组 | 第43-44页 |
| 7.2.1 实验动物 | 第43页 |
| 7.2.2 3％DSS溶液配制 | 第43页 |
| 7.2.3 实验分组及药物干预 | 第43-44页 |
| 7.3 标本采集 | 第44页 |
| 7.4 溃疡性结肠炎小鼠的病情评估 | 第44-46页 |
| 7.4.1 疾病活动指数积分(diseaseactivationindex,DAI) | 第44-45页 |
| 7.4.2 肠管长度的变化 | 第45-46页 |
| 7.5 结肠组织MPO活性检测 | 第46页 |
| 7.6 透射电镜观察肠上皮细胞间连接 | 第46-47页 |
| 7.7 统计学处理 | 第47页 |
| 8 结果 | 第47-58页 |
| 8.1 一般情况变化 | 第47-49页 |
| 8.2 体重减轻情况 | 第49-50页 |
| 8.3 疾病活动指数积分(DAI) | 第50-51页 |
| 8.4 肠管长度变化 | 第51-52页 |
| 8.5 病理组织学评分 | 第52-55页 |
| 8.5.1 结肠组织病理学改变 | 第52-54页 |
| 8.5.2 各组小鼠肠组织病理学评分 | 第54-55页 |
| 8.6 结肠组织MPO活性 | 第55-56页 |
| 8.7 透射电子显微镜观察结肠上皮细胞间紧密连接变化 | 第56-58页 |
| 9 讨论 | 第58-61页 |
| 10 结论 | 第61-63页 |
| 第三部分 ：山姜素对溃疡性结肠炎小鼠肠上皮屏障保护作用的研究 | 第63-83页 |
| 11 前言 | 第63-64页 |
| 12 材料和方法 | 第64-74页 |
| 12.1 主要试剂和仪器 | 第64-66页 |
| 12.1.1 主要仪器 | 第64-65页 |
| 12.1.2 试剂和药品 | 第65-66页 |
| 12.2 实验动物和分组 | 第66-67页 |
| 12.2.1 实验动物 | 第66页 |
| 12.2.2 3％DSS溶液配制 | 第66页 |
| 12.2.3 实验分组及药物干预 | 第66-67页 |
| 12.3 标本采集 | 第67页 |
| 12.4 免疫组织化学检测 | 第67-68页 |
| 12.5 Westernblot检测 | 第68-71页 |
| 12.5.1 结肠组织总蛋白的提取 | 第68页 |
| 12.5.2 BCA方法测定蛋白浓度 | 第68-69页 |
| 12.5.3 SDS–PAGE胶的制备 | 第69页 |
| 12.5.4 样品的处理 | 第69页 |
| 12.5.5 电泳 | 第69-70页 |
| 12.5.6 转膜 | 第70页 |
| 12.5.7 封闭 | 第70页 |
| 12.5.8 一抗孵育 | 第70页 |
| 12.5.9 二抗孵育 | 第70页 |
| 12.5.10 发光 | 第70-71页 |
| 12.5.11 WesternBlot结果量化分析 | 第71页 |
| 12.6 Real-timePCR检测 | 第71-72页 |
| 12.6.1 小鼠肠组织总RNA的提取 | 第71页 |
| 12.6.2 反转录体系 | 第71页 |
| 12.6.3 聚合酶链式反应 | 第71-72页 |
| 12.7 结肠组织SOD和MDA含量检测 | 第72-74页 |
| 12.7.1 结肠组织蛋白质提取 | 第72页 |
| 12.7.2 BCA方法测定蛋白浓度 | 第72-73页 |
| 12.7.3 MDA含量测定 | 第73页 |
| 12.7.4 SOD含量测定 | 第73-74页 |
| 12.8 统计学处理 | 第74页 |
| 13 结果 | 第74-80页 |
| 13.1 紧密连接蛋白免疫组化表达结果 | 第74-76页 |
| 13.2 紧密连接蛋白WesternBlot检测结果 | 第76-78页 |
| 13.3 紧密连接蛋白Real-timePCR表达情况 | 第78-79页 |
| 13.4 MDA和SOD含量测定结果 | 第79-80页 |
| 14 讨论 | 第80-82页 |
| 15 结论 | 第82-83页 |
| 第四部分 ：山姜素对溃疡性结肠炎小鼠肠上皮屏障作用机制的研究 | 第83-102页 |
| 16 前言 | 第83-84页 |
| 17 材料和方法 | 第84-91页 |
| 17.1 主要试剂和仪器 | 第84-86页 |
| 17.1.1 主要仪器 | 第84-85页 |
| 17.1.2 试剂和药品 | 第85-86页 |
| 17.2 实验动物和分组 | 第86-87页 |
| 17.2.1 实验动物 | 第86页 |
| 17.2.2 溶液配制 | 第86页 |
| 17.2.3 实验分组1及药物干预 | 第86-87页 |
| 17.2.4 实验分组2及药物干预 | 第87页 |
| 17.3 标本采集 | 第87页 |
| 17.4 Westernblot检测 | 第87-90页 |
| 17.4.1 结肠组织总蛋白的提取 | 第87-88页 |
| 17.4.2 BCA方法测定蛋白浓度 | 第88页 |
| 17.4.3 SDS–PAGE胶的制备 | 第88页 |
| 17.4.4 样品的处理 | 第88页 |
| 17.4.5 电泳 | 第88-89页 |
| 17.4.6 转膜 | 第89页 |
| 17.4.7 封闭 | 第89页 |
| 17.4.8 一抗孵育 | 第89页 |
| 17.4.9 二抗孵育 | 第89页 |
| 17.4.10 发光 | 第89-90页 |
| 17.4.11 WesternBlot结果量化分析 | 第90页 |
| 17.5 Real-time PCR 检测 | 第90-91页 |
| 17.6 统计学处理 | 第91页 |
| 18 结果 | 第91-98页 |
| 18.1 山姜素对IL-6/STAT3和Nrf2/HO-1信号通路的影响 | 第91-94页 |
| 18.1.1 Westernblot结果 | 第91-93页 |
| 18.1.2 Real-timePCR结果 | 第93-94页 |
| 18.2 Znpp对紧密连接蛋白表达的影响 | 第94-96页 |
| 18.3 Znpp对IL-6/STAT3和Nrf2/HO-1信号通路的影响 | 第96-98页 |
| 19 讨论 | 第98-100页 |
| 20 结论 | 第100-102页 |
| 本研究创新性的自我评价 | 第102-103页 |
| 参考文献 | 第103-114页 |
| 综述 | 第114-128页 |
| 参考文献 | 第120-128页 |
| 攻读学位期间取得的科研成果 | 第128-129页 |
| 致谢 | 第129-130页 |
| 个人简介 | 第130页 |
