| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 文献综述 | 第13-30页 |
| 第一章 TGF-β通路基因及分子标记技术研究进展 | 第13-30页 |
| 1.1 TGF-β通路及关键基因研究进展 | 第13-24页 |
| 1.1.1 TGF-β超家族组成及功能 | 第13页 |
| 1.1.2 TGF-β信号通路的调节 | 第13-14页 |
| 1.1.3 TGF-β信号通路与其他信号通路的关系 | 第14-15页 |
| 1.1.4 LTBP1基因研究进展 | 第15页 |
| 1.1.5 THBS1基因研究进展 | 第15-17页 |
| 1.1.5.1 THBS1基因结构和功能 | 第15-16页 |
| 1.1.5.2 THBS1对TGF-β信号通路的调节 | 第16-17页 |
| 1.1.6 SMAD4基因研究进展 | 第17-21页 |
| 1.1.6.1 SMAD4的结构和功能 | 第18页 |
| 1.1.6.2 SMAD4在TGF-β信号转导通路中的作用 | 第18-21页 |
| 1.1.7 LHX3/4基因研究进展 | 第21-22页 |
| 1.1.8 PITX2基因研究进展 | 第22-24页 |
| 1.2 分子标记选择育种相关技术研究 | 第24-29页 |
| 1.2.1 SNP研究进展 | 第24-26页 |
| 1.2.1.1 SNP的概念 | 第24页 |
| 1.2.1.2 SNP的研究历程 | 第24-26页 |
| 1.2.1.3 SNP的特性 | 第26页 |
| 1.2.1.4 SNP检测方法 | 第26页 |
| 1.2.2 InDel的产生机制及特征 | 第26-29页 |
| 1.2.2.1 InDel的来源 | 第27页 |
| 1.2.2.2 InDel特点 | 第27-28页 |
| 1.2.2.3 InDel检测分型方法 | 第28-29页 |
| 1.3 研究的目的和意义 | 第29-30页 |
| 试验研究 | 第30-77页 |
| 第二章 LTBP1基因InDel对绵羊生长性状的影响 | 第30-43页 |
| 2.1 前言 | 第30页 |
| 2.2 材料和方法 | 第30-33页 |
| 2.2.1 试验动物及样品采集 | 第30页 |
| 2.2.2 试验仪器和试剂配制 | 第30页 |
| 2.2.3 绵羊血样和耳组织样DNA的提取 | 第30页 |
| 2.2.4 基因组DNA的检测 | 第30-31页 |
| 2.2.5 InDel位点的筛选 | 第31页 |
| 2.2.6 LTBP1基因插入缺失位点特异性引物设计与合成 | 第31-32页 |
| 2.2.7 DNA混池的制作 | 第32页 |
| 2.2.8 含有InDel的目的片段的PCR扩增 | 第32页 |
| 2.2.9 体尺性状的测量 | 第32页 |
| 2.2.10 数据统计 | 第32-33页 |
| 2.3 结果与分析 | 第33-41页 |
| 2.3.1 LTBP1基因的三个InDel位点基因分型 | 第33-37页 |
| 2.3.2 LTBP1基因InDel对绵羊体尺性状的影响 | 第37-41页 |
| 2.4 讨论 | 第41-42页 |
| 2.5 小结 | 第42-43页 |
| 第三章 THBS1基因InDel对绵羊生长性状的影响 | 第43-55页 |
| 3.1 前言 | 第43页 |
| 3.2 材料与方法 | 第43-44页 |
| 3.2.1 试验动物及样品采集 | 第43页 |
| 3.2.2 试验仪器和试剂配制 | 第43页 |
| 3.2.3 绵羊血样和耳组织样DNA的提取 | 第43页 |
| 3.2.4 基因组DNA的检测 | 第43页 |
| 3.2.5 InDel位点的筛选 | 第43-44页 |
| 3.2.6 THBS1基因插入缺失位点特异性引物设计与合成 | 第44页 |
| 3.2.7 DNA混池的制作 | 第44页 |
| 3.2.8 含有InDel的目的片段的PCR扩增 | 第44页 |
| 3.2.9 体尺性状的测量 | 第44页 |
| 3.2.10 数据统计 | 第44页 |
| 3.3 结果与分析 | 第44-53页 |
| 3.3.1 THBS1基因InDel位点的基因分型及多态性 | 第44-48页 |
| 3.3.2 THBS1基因InDel对绵羊生长性状的影响 | 第48-53页 |
| 3.4 讨论 | 第53-54页 |
| 3.5 小结 | 第54-55页 |
| 第四章 SMAD4基因InDel对绵羊生长性状的影响 | 第55-62页 |
| 4.1 前言 | 第55页 |
| 4.2 材料与方法 | 第55-56页 |
| 4.2.1 试验动物及样品采集 | 第55页 |
| 4.2.2 试验仪器和试剂配制 | 第55页 |
| 4.2.3 绵羊血样和耳组织样DNA的提取 | 第55页 |
| 4.2.4 基因组DNA的检测 | 第55页 |
| 4.2.5 InDel位点的筛选 | 第55页 |
| 4.2.6 SMAD4基因插入缺失位点特异性引物设计与合成 | 第55-56页 |
| 4.2.7 DNA混池的制作 | 第56页 |
| 4.2.8 含有InDel的目的片段的PCR扩增 | 第56页 |
| 4.2.9 体尺性状的测量 | 第56页 |
| 4.2.10 数据统计 | 第56页 |
| 4.3 结果与分析 | 第56-60页 |
| 4.3.1 SMAD4基因InDel基因分型结果 | 第56-57页 |
| 4.3.2 SMAD4基因InDel基因型频率及多态性 | 第57-58页 |
| 4.3.3 SMAD4基因InDel对绵羊体尺性状的影响 | 第58-59页 |
| 4.3.4 SMAD4基因InDel对绵羊体尺指数的影响 | 第59-60页 |
| 4.4 讨论 | 第60-61页 |
| 4.5 小结 | 第61-62页 |
| 第五章 LHX3/4基因InDel对绵羊生长性状的影响 | 第62-69页 |
| 5.1 前言 | 第62页 |
| 5.2 材料和方法 | 第62-64页 |
| 5.2.1 试验动物及样品采集 | 第62页 |
| 5.2.2 试验仪器和试剂配制 | 第62页 |
| 5.2.3 绵羊血样和耳组织样DNA的提取 | 第62页 |
| 5.2.4 基因组DNA的检测 | 第62页 |
| 5.2.5 InDel位点的筛选 | 第62-63页 |
| 5.2.6 LHX3/4基因插入缺失位点特异性引物设计与合成 | 第63页 |
| 5.2.7 DNA混池的制作 | 第63页 |
| 5.2.8 含有InDel的目的片段的PCR扩增 | 第63页 |
| 5.2.9 体尺性状的测量 | 第63页 |
| 5.2.10 数据统计 | 第63-64页 |
| 5.3 结果与分析 | 第64-67页 |
| 5.3.1 LHX3/4基因InDel分型及多态性 | 第64-66页 |
| 5.3.2 LHX3基因InDel与生长性状的关联分析 | 第66-67页 |
| 5.4 讨论 | 第67-68页 |
| 5.5 小结 | 第68-69页 |
| 第六章 PITX2基因InDel对绵羊生长性状的影响 | 第69-77页 |
| 6.1 前言 | 第69页 |
| 6.2 材料和方法 | 第69-71页 |
| 6.2.1 试验动物及样品采集 | 第69页 |
| 6.2.2 试验仪器和试剂配制 | 第69页 |
| 6.2.3 绵羊血样和耳组织样DNA的提取 | 第69页 |
| 6.2.4 基因组DNA的检测 | 第69页 |
| 6.2.5 InDel位点的筛选 | 第69-70页 |
| 6.2.6 PITX2基因插入缺失位点特异性引物设计与合成 | 第70页 |
| 6.2.7 DNA混池的制作 | 第70页 |
| 6.2.8 PCR扩增及测序 | 第70页 |
| 6.2.9 特异性限制性内切酶消化和2.5％琼脂糖凝胶电泳 | 第70页 |
| 6.2.10 体尺性状的测量 | 第70页 |
| 6.2.11 数据统计 | 第70-71页 |
| 6.3 结果与分析 | 第71-75页 |
| 6.3.1 PITX2基因的InDel分型 | 第71-73页 |
| 6.3.2 绵羊PITX2基因InDel位点的多态性分析 | 第73页 |
| 6.3.3 PITX2基因的连锁不平衡和单倍型分析 | 第73-74页 |
| 6.3.4 PITX2基因InDel对绵羊生长性状的影响 | 第74-75页 |
| 6.4 讨论 | 第75-76页 |
| 6.5 小结 | 第76-77页 |
| 结论 | 第77-78页 |
| 创新点 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-88页 |
| 附录 | 第88-89页 |
| 缩略词 | 第89-90页 |
| 致谢 | 第90-91页 |
| 作者简介 | 第91页 |
