| 摘要 | 第6-8页 |
| abstract | 第8-9页 |
| 文献综述 | 第12-27页 |
| 第一章 PI3K的研究进展 | 第12-19页 |
| 1.1 PI3K的结构和分类 | 第12-15页 |
| 1.1.1 ClassIPI3Ks | 第12-13页 |
| 1.1.2 ClassIIPI3Ks | 第13页 |
| 1.1.3 ClassIIIPI3Ks | 第13-15页 |
| 1.2 PI3K/AKT/mTOR信号通路 | 第15-16页 |
| 1.3 PI3K/AKT/mTOR信号通路在大脑发育中的研究进展 | 第16-17页 |
| 1.4 小结与展望 | 第17-19页 |
| 第二章 小鼠大脑皮层发育 | 第19-27页 |
| 2.1 小鼠大脑皮层的结构和功能 | 第19-21页 |
| 2.2 小鼠大脑皮层发育的基本过程 | 第21-22页 |
| 2.3 影响大脑皮层发育的重要分子 | 第22-24页 |
| 2.4 子宫内电击转染 | 第24-26页 |
| 2.5 小结与展望 | 第26-27页 |
| 实验研究 | 第27-62页 |
| 第三章 超表达载体构建 | 第27-37页 |
| 3.1 材料方法 | 第27-33页 |
| 3.1.1 试剂材料 | 第27页 |
| 3.1.2 pGEM-T-P85克隆载体构建及鉴定 | 第27-31页 |
| 3.1.3 pCAG-MCS-P85-GFP表达载体构建及鉴定 | 第31-33页 |
| 3.2 实验结果 | 第33-36页 |
| 3.2.1 P85克隆载体的构建及鉴定 | 第33-34页 |
| 3.2.2 P85表达载体的构建及鉴定 | 第34-36页 |
| 3.3 讨论 | 第36页 |
| 3.4 小结 | 第36-37页 |
| 第四章 超表达P85影响神经元形态及迁移 | 第37-50页 |
| 4.1 材料方法 | 第37-40页 |
| 4.1.1 试剂材料 | 第37页 |
| 4.1.2 子宫内电击转染 | 第37-39页 |
| 4.1.3 原代神经元培养 | 第39-40页 |
| 4.1.4 免疫荧光染色 | 第40页 |
| 4.1.5 拍照统计 | 第40页 |
| 4.2 实验结果 | 第40-48页 |
| 4.2.1 超表达P85影响原代神经元形态 | 第40-42页 |
| 4.2.2 超表达P85影响神经元迁移 | 第42-44页 |
| 4.2.3 超表达P85影响迁移中的神经元形态 | 第44-45页 |
| 4.2.4 超表达P85影响神经元层定位 | 第45-47页 |
| 4.2.5 超表达P85不改变神经元的命运决定 | 第47-48页 |
| 4.3 讨论 | 第48-49页 |
| 4.4 小结 | 第49-50页 |
| 第五章 超表达P85影响神经祖细胞增殖分化 | 第50-62页 |
| 5.1 材料方法 | 第50-51页 |
| 5.1.1 试剂材料 | 第50页 |
| 5.1.2 子宫内电击转染 | 第50页 |
| 5.1.3 BrdU标记 | 第50-51页 |
| 5.1.4 免疫荧光染色 | 第51页 |
| 5.1.5 拍照统计 | 第51页 |
| 5.2 实验结果 | 第51-60页 |
| 5.2.1 超表达P85影响神经祖细胞增殖 | 第51-54页 |
| 5.2.2 超表达P85影响神经细胞周期长度 | 第54-57页 |
| 5.2.3 超表达P85影响神经细胞成熟 | 第57-59页 |
| 5.2.4 超表达P85影响神经细胞分化 | 第59-60页 |
| 5.3 讨论 | 第60-61页 |
| 5.4 小结 | 第61-62页 |
| 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-71页 |
| 缩略词 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 作者简介 | 第73-74页 |
