| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 目录 | 第9-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-25页 |
| 1.1 概述 | 第12页 |
| 1.2 苦瓜的开发利用现状 | 第12-13页 |
| 1.3 植物多糖的研究现状 | 第13-22页 |
| 1.3.1 植物多糖的药理活性 | 第14-16页 |
| 1.3.2 植物多糖的提取 | 第16-19页 |
| 1.3.3 多糖的纯化分离工艺 | 第19-21页 |
| 1.3.4 多糖的纯度鉴定 | 第21页 |
| 1.3.5 多糖的分子量测定 | 第21-22页 |
| 1.3.6 多糖的结构鉴定 | 第22页 |
| 1.4 课题研究的主要意义及研究内容 | 第22-25页 |
| 1.4.1 研究的意义 | 第22-23页 |
| 1.4.2 研究的主要内容 | 第23-24页 |
| 1.4.3 创新点 | 第24-25页 |
| 第二章 苦瓜藤多糖的提取工艺优化 | 第25-38页 |
| 2.1 引言 | 第25页 |
| 2.2 实验材料 | 第25-26页 |
| 2.2.1 原料 | 第25页 |
| 2.2.2 实验试剂及仪器 | 第25-26页 |
| 2.3 实验方法 | 第26-29页 |
| 2.3.1 苦瓜藤多糖含量测定方法 | 第26-27页 |
| 2.3.2 苦瓜藤多糖超声波提取工艺 | 第27-28页 |
| 2.3.3 苦瓜藤多糖热水提取工艺 | 第28页 |
| 2.3.4 苦瓜藤多糖超声波提取工艺与普通热水提取工艺的比较 | 第28-29页 |
| 2.4 实验结果与讨论 | 第29-36页 |
| 2.4.1 葡萄糖标准曲线 | 第29页 |
| 2.4.2 超声波提取工艺研究 | 第29-33页 |
| 2.4.3 热水提取工艺研究 | 第33-36页 |
| 2.4.4 超声波提取工艺与普通热水提取工艺的比较 | 第36页 |
| 2.5 本章小结 | 第36-38页 |
| 第三章 苦瓜藤多糖的分离纯化 | 第38-53页 |
| 3.1 引言 | 第38页 |
| 3.2 实验材料 | 第38-40页 |
| 3.2.1 原料 | 第38-39页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第39页 |
| 3.2.3 实验仪器 | 第39-40页 |
| 3.3 实验方法 | 第40-44页 |
| 3.3.1 苦瓜藤多糖脱蛋白工艺研究 | 第40-41页 |
| 3.3.2 树脂脱色工艺研究 | 第41-42页 |
| 3.3.3 DEAE-52 Cellulose柱层析纯化 | 第42-43页 |
| 3.3.4 Sephadex G-200柱层析纯化 | 第43-44页 |
| 3.4 实验结果与讨论 | 第44-52页 |
| 3.4.1 苦瓜藤多糖脱蛋白工艺研究 | 第44-47页 |
| 3.4.2 树脂脱色工艺研究 | 第47-49页 |
| 3.4.3 DEAE-52 Cellulose柱层析纯化 | 第49-50页 |
| 3.4.4 苦瓜藤多糖的Sephadex G-200柱层析纯化 | 第50-52页 |
| 3.5 本章小结 | 第52-53页 |
| 第四章 苦瓜藤多糖的组成及其性质研究 | 第53-63页 |
| 4.1 引言 | 第53页 |
| 4.2 实验试剂及仪器 | 第53-54页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第53页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第53-54页 |
| 4.3 实验方法 | 第54-55页 |
| 4.3.1 多糖的理化性质分析 | 第54页 |
| 4.3.2 多糖的单糖组成分析 | 第54-55页 |
| 4.3.3 BI-MwA/BI-DNDC绝对分子量表征系统测定多糖分子量 | 第55页 |
| 4.3.4 苦瓜藤多糖的红外光谱分析 | 第55页 |
| 4.4 实验结果与讨论 | 第55-62页 |
| 4.4.1 多糖的理化性质分析 | 第55页 |
| 4.4.2 多糖的单糖组成分析 | 第55-58页 |
| 4.4.3 多糖的相对分子量测定 | 第58-60页 |
| 4.4.4 多糖的红外图谱分析 | 第60-62页 |
| 4.5 本章小结 | 第62-63页 |
| 第五章 结论与展望 | 第63-66页 |
| 5.1 结论 | 第63-65页 |
| 5.2 展望 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-71页 |
| 攻读硕士学位期间的研究成果 | 第71页 |
