| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第1章 引言 | 第10-12页 |
| 第2章 材料和方法 | 第12-24页 |
| 2.1 主要试剂和材料 | 第12-13页 |
| 2.1.1 主要实验试剂 | 第12-13页 |
| 2.1.2 主要实验器材 | 第13页 |
| 2.2 实验动物和分组 | 第13-14页 |
| 2.2.1 动物选择与饲养 | 第13-14页 |
| 2.2.2 实验分组与干预 | 第14页 |
| 2.3 局灶性脑缺血模型鼠的制备和判断 | 第14-16页 |
| 2.3.1 线栓制备 | 第14页 |
| 2.3.2 手术步骤 | 第14-15页 |
| 2.3.3 判断建模是否成功 | 第15-16页 |
| 2.4 神经功能评分 | 第16-17页 |
| 2.5 TTC染色检测脑梗死体积 | 第17页 |
| 2.6 脑组织含水量测定 | 第17页 |
| 2.7 免疫组化测定脑组织中p-p38MAPK、AQP4的表达 | 第17-18页 |
| 2.8 Western blot检测脑组织中p-p38MAPK和AQP4的表达 | 第18-21页 |
| 2.8.1 蛋白提取 | 第18-19页 |
| 2.8.2 制备电泳凝胶 | 第19-20页 |
| 2.8.3 蛋白电泳与转膜 | 第20页 |
| 2.8.4 蛋白免疫杂交 | 第20页 |
| 2.8.5 发光反应 | 第20-21页 |
| 2.8.6 膜再生检测内参 | 第21页 |
| 2.8.7 蛋白条带密度扫描分析 | 第21页 |
| 2.9 实时荧光定量PCR | 第21-23页 |
| 2.9.1 总RNA提取 | 第21-22页 |
| 2.9.2 cDNA合成 | 第22页 |
| 2.9.3 RT-qPCR | 第22页 |
| 2.9.4 计算方法 | 第22-23页 |
| 2.10 统计分析 | 第23-24页 |
| 第3章 结果 | 第24-33页 |
| 3.1 阿托伐他汀改善大鼠行为症状和降低mNSS | 第24页 |
| 3.2 验证阿托伐他汀降低脑梗死体积 | 第24-25页 |
| 3.3 阿托伐他汀改善缺血侧脑组织含水量 | 第25-26页 |
| 3.4 阿托伐他汀降低p-p38MAPK、AQP4的细胞表达 | 第26-28页 |
| 3.5 阿托伐他汀降低p-p38MAPK和AQP4的蛋白表达 | 第28-30页 |
| 3.6 阿托伐他汀下调p38MAPK和AQP4的mRNA表达 | 第30-33页 |
| 第4章 讨论 | 第33-36页 |
| 第5章 结论 | 第36-37页 |
| 致谢 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-41页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第41-42页 |
| 综述 | 第42-48页 |
| 参考文献 | 第47-48页 |
