| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第10-11页 |
| 第1章 前言 | 第11-13页 |
| 第2章 材料与仪器 | 第13-18页 |
| 2.1 实验动物 | 第13-16页 |
| 2.1.1 主要购置试剂 | 第13-14页 |
| 2.1.2 主要试剂的配制 | 第14-16页 |
| 2.2 实验仪器 | 第16-18页 |
| 第3章 实验方法 | 第18-25页 |
| 3.1 蛛网膜下腔出血模型的建立 | 第18页 |
| 3.2 活体荧光显微镜鉴定蛛网膜下腔出血模型 | 第18-19页 |
| 3.2.1 实验分组 | 第18页 |
| 3.2.2 颅骨开窗手术 | 第18-19页 |
| 3.2.3 活体荧光显微镜观察 | 第19页 |
| 3.3 Western blotting技术检测血管Cx40蛋白表达的变化 | 第19-23页 |
| 3.3.1 实验分组及步骤 | 第19-20页 |
| 3.3.2 样品总蛋白制备 | 第20页 |
| 3.3.3 样品蛋白含量的测定 | 第20页 |
| 3.3.4 配制 5%积层胶及 12%分离胶 | 第20-21页 |
| 3.3.5 灌胶及上样 | 第21页 |
| 3.3.6 垂直电泳 | 第21页 |
| 3.3.7 转膜 | 第21-22页 |
| 3.3.8 目标蛋白免疫反应 | 第22页 |
| 3.3.9 目标蛋白化学发光及曝光 | 第22页 |
| 3.3.10 膜再生 | 第22页 |
| 3.3.11 内参蛋白免疫反应、化学发光和曝光等 | 第22页 |
| 3.3.12 图像分析与数据统计分析 | 第22-23页 |
| 3.4 游离动脉环张力实验 | 第23-25页 |
| 3.4.1 实验分组及操作步骤 | 第23页 |
| 3.4.2 游离大鼠离体基底动脉环的制备及安装 | 第23-24页 |
| 3.4.3 游离基底动脉环的NO介导舒张的变化曲线 | 第24页 |
| 3.4.4 数据统计分析 | 第24-25页 |
| 第4章 结果 | 第25-31页 |
| 4.1 SD大鼠SAH模型建立 | 第25页 |
| 4.2 实验性SAH模型鉴定 | 第25-26页 |
| 4.3 大鼠基底动脉Cx40表达 | 第26-27页 |
| 4.4 血管环张力实验 | 第27-31页 |
| 4.4.1 SAH大鼠基底动脉NO介导舒张反应 | 第27-28页 |
| 4.4.2 DETA-NO对SAH大鼠基底动脉介导NO舒张反应的影响 | 第28-29页 |
| 4.4.3 PKG激活剂对SAH大鼠基底动脉介导NO舒张反应的影响 | 第29页 |
| 4.4.4 PKG阻断剂对大鼠基底动脉介导NO舒张反应的影响 | 第29-30页 |
| 4.4.5 Cx40特异性阻断剂对大鼠基底动脉介导NO舒张反应的影响 | 第30-31页 |
| 第5章 讨论 | 第31-38页 |
| 5.1 SAH后CVS病理过程 | 第31-32页 |
| 5.2 缝隙连接 | 第32-34页 |
| 5.2.1 GJ结构与血管功能 | 第32-33页 |
| 5.2.2 Cx40与血管功能 | 第33-34页 |
| 5.3 NO生物学特性及对GJ的调控 | 第34-35页 |
| 5.4 探讨NO介导Cx40参与缓解CVS的部分机制 | 第35-36页 |
| 5.5 存在的问题 | 第36-38页 |
| 第6章 结论与展望 | 第38-39页 |
| 6.1 结论 | 第38页 |
| 6.2 展望 | 第38-39页 |
| 致谢 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-44页 |
| 附图 | 第44-47页 |
| 综述 | 第47-53页 |
| 参考文献 | 第52-53页 |
