| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-24页 |
| 1 A型流感病毒概况 | 第10-17页 |
| 1.1 A型流感病毒分子生物学特征 | 第11-12页 |
| 1.2 流感病毒复制周期 | 第12-14页 |
| 1.3 抗流感药物与流感疫苗研究现状 | 第14页 |
| 1.4 NP的结构和功能 | 第14-16页 |
| 1.5 磷酸化修饰与NP蛋白 | 第16-17页 |
| 2 CDC25B蛋白概述 | 第17-19页 |
| 2.1 CDC25B蛋白结构与特征 | 第17页 |
| 2.2 CDC25B蛋白与细胞周期 | 第17-18页 |
| 2.3 CDC25B蛋白与肿瘤 | 第18-19页 |
| 3 CRISPR/Cas9系统 | 第19-20页 |
| 4 神经氨酸酶(Neuraminidase,NA) | 第20-21页 |
| 5 A型流感病毒诊断方法的研究进展 | 第21-24页 |
| 5.1 血凝和血凝抑制试验 | 第21-22页 |
| 5.2 中和试验 | 第22页 |
| 5.3 琼脂凝胶扩散试验 | 第22页 |
| 5.4 免疫荧光法 | 第22-23页 |
| 5.5 酶联免疫吸附试验 | 第23-24页 |
| 第二章 CDC25B对A型流感病毒复制调控的研究 | 第24-44页 |
| 引言 | 第24-25页 |
| 1 材料与方法 | 第25-35页 |
| 1.1 实验材料 | 第25-28页 |
| 1.2 实验方法 | 第28-35页 |
| 2 结果 | 第35-41页 |
| 2.1 CDC25B-/-HELA细胞系的构建 | 第35-37页 |
| 2.2 CDC25B影响细胞G2/M期进程 | 第37-38页 |
| 2.3 CDC25B促进A型流感病毒的复制 | 第38-39页 |
| 2.4 CDC25B促进NP蛋白出核 | 第39-40页 |
| 2.5 CDC25B影响流感病毒vRNP活性 | 第40-41页 |
| 3 讨论 | 第41-43页 |
| 4 本章小结 | 第43-44页 |
| 第三章 H5N1流感病毒NA蛋白间接ELISA检测方法建立的研究 | 第44-60页 |
| 引言 | 第44-45页 |
| 1 实验材料与方法 | 第45-51页 |
| 1.1 实验材料 | 第45-48页 |
| 1.2 实验方法 | 第48-51页 |
| 1.2.1 H5N1亚型流感病毒NA蛋白同源型分析 | 第48-51页 |
| 2 结果 | 第51-57页 |
| 2.1 N1蛋白同源性及遗传进化树分析 | 第51-52页 |
| 2.2 阳性重组质粒pET28a-N1鉴定 | 第52-53页 |
| 2.3 N1蛋白的表达纯化 | 第53页 |
| 2.4 抗原包被最佳浓度以及血清最佳稀释度的确定 | 第53-54页 |
| 2.5 封闭液的优化结果 | 第54页 |
| 2.6 封闭时间的优化结果 | 第54-55页 |
| 2.7 N1-ELISA检测方法的交叉试验 | 第55-56页 |
| 2.8 N1-ELISA检测方法的批内与批间重复性试验 | 第56-57页 |
| 3 讨论 | 第57-59页 |
| 4 本章小结 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-68页 |
| 硕士阶段待发表论文 | 第68-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
