本论文创新点 | 第5-6页 |
摘要 | 第6-9页 |
Abstract | 第9-12页 |
目录 | 第13-16页 |
第一章:绪论 | 第16-68页 |
1.1 引言 | 第16页 |
1.2 FRET的原理 | 第16-19页 |
1.3 FRET的应用 | 第19-38页 |
1.3.1 FRET中的荧光供体 | 第19-21页 |
1.3.2 FRET中的荧光受体 | 第21-38页 |
1.3.2.1 荧光蛋白 | 第21-23页 |
1.3.2.2 有机小分子染料 | 第23-25页 |
1.3.2.3 量子点 | 第25-26页 |
1.3.2.4 碳纳米材料 | 第26-31页 |
1.3.2.5 二维金属硫化物和氧化物纳米片 | 第31-34页 |
1.3.2.6 芳香族聚合物纳米材料 | 第34页 |
1.3.2.7 贵金属纳米材料 | 第34-38页 |
1.4 钯纳米材料的研究现状及应用 | 第38-48页 |
1.4.1 钯纳米材料的合成 | 第38-43页 |
1.4.1.1 金属化合物热分解法 | 第38-40页 |
1.4.1.2 超声波辐射法 | 第40页 |
1.4.1.3 微波辐射法 | 第40-41页 |
1.4.1.4 辐射还原法 | 第41-42页 |
1.4.1.5 化学还原法 | 第42-43页 |
1.4.2 钯纳米材料的应用 | 第43-48页 |
1.4.2.1 催化剂 | 第43-45页 |
1.4.2.2 储氢材料 | 第45-46页 |
1.4.2.3 表面增强拉曼散射(SERS) | 第46-47页 |
1.4.2.4 生物标记 | 第47-48页 |
1.5 本论文的立题思想和主要内容 | 第48-51页 |
参考文献 | 第51-68页 |
第二章:基于纳米钯的荧光猝灭性质建立的荧光共振能量转移体系用于超灵敏的生物分析检测 | 第68-85页 |
2.1 引言 | 第68-69页 |
2.2 实验部分 | 第69-72页 |
2.2.1 实验试剂 | 第69-70页 |
2.2.2 实验仪器 | 第70页 |
2.2.3 柠檬酸钠稳定的纳米钯晶种(Pd seeds,11nm)的合成 | 第70-71页 |
2.2.4 钯纳米颗粒(PdNPs,31nm)的合成 | 第71页 |
2.2.5 31nm PdNPs对FAM-probe ssDNA的荧光猝灭研究 | 第71页 |
2.2.6 FAM-probe ssDNA-PdNPs传感器用于核酸检测 | 第71-72页 |
2.2.7 基于TAMRA-peptide-PdNPs FRET体系检测凝血酶 | 第72页 |
2.3 结果与讨论 | 第72-81页 |
2.3.1 FAM-probe ssDNA-PdNPs FRET传感平台构建原理 | 第72-73页 |
2.3.2 PdNPs的表征 | 第73-75页 |
2.3.3 PdNPs对FAM-probe ssDNA的荧光猝灭 | 第75-77页 |
2.3.4 FAM-probe ssDNA-PdNPs传感器用于核酸检测 | 第77-79页 |
2.3.5 TAMRA-peptide-PdNPs传感器检测凝血酶的原理 | 第79-80页 |
2.3.6 TAMRA-substrate peptide-PdNPs传感器用于凝血酶的检测 | 第80-81页 |
2.4 结论 | 第81-82页 |
参考文献 | 第82-85页 |
第三章:氮化碳纳米片与其负载的钯纳米颗粒构成的一体化FRET探针用于半胱氨酸的检测 | 第85-97页 |
3.1 引言 | 第85-86页 |
3.2 实验部分 | 第86-88页 |
3.2.1 实验试剂 | 第86页 |
3.2.2 实验仪器 | 第86-87页 |
3.2.3 大块g-C_3N_4的合成 | 第87页 |
3.2.4 g-C_3N_4纳米片的合成 | 第87-88页 |
3.2.5 g-C_3N_4-PdNPs复合纳米材料的合成 | 第88页 |
3.2.6 将g-C_3N_4-PdNPs一体化FRET探针用于半胱氨酸的检测 | 第88页 |
3.3 结果与讨论 | 第88-93页 |
3.3.1 g-C_3N_4-PdNPs一体化FRET探针检测半胱氨酸的原理 | 第88-90页 |
3.3.2 大块g-C_3N_4及g-C_3N_4纳米片和g-C_3N_4-PdNPs的表征 | 第90-91页 |
3.3.3 g-C_3N_4-PdNPs一体化FRET探针用于半胱氨酸的检测 | 第91-92页 |
3.3.4 g-C_3N_4-PdNPs一体化FRET探针的选择性 | 第92-93页 |
3.4 结论 | 第93页 |
参考文献 | 第93-97页 |
第四章:基于纳米钯为受体的UC-FRET癌胚抗原传感器的构建及其在血清中的分析应用 | 第97-113页 |
4.1 引言 | 第97-98页 |
4.2 实验部分 | 第98-102页 |
4.2.1 实验试剂 | 第98-99页 |
4.2.2 实验仪器 | 第99-100页 |
4.2.3 油酸稳定的NaYF_4:Yb,Tm(OA-UCNPs)的合成 | 第100页 |
4.2.4 配体交换OA-UCNPs得到HDA-UCNPs | 第100-101页 |
4.2.5 巯基十一烷酸修饰的纳米钯(MUDA-PdNPs)的合成 | 第101页 |
4.2.6 氨基修饰的CEA aptamer与HDA-UCNPs的偶联 | 第101页 |
4.2.7 MUDA-PdNPs对UCNPs-CEA aptamer的荧光猝灭的研究 | 第101-102页 |
4.2.8 UC-FRET传感器用于缓冲溶液和血清中CEA的测定 | 第102页 |
4.3 结果与讨论 | 第102-108页 |
4.3.1 基于UC-FRET的CEA适配体传感器的检测原理 | 第102-103页 |
4.3.2 荧光供体NaYF_4:Yb,Tm的表征 | 第103-104页 |
4.3.3 荧光受体MUDA-PdNPs的表征 | 第104页 |
4.3.4 HDA-UCNPs与MUDA-PdNPs之间的FRET传感器的构建 | 第104-106页 |
4.3.5 UC-FRET传感器用于缓冲溶液中CEA的检测 | 第106-107页 |
4.3.6 UC-FRET传感器用于血清中CEA的检测 | 第107-108页 |
4.4 结论 | 第108-109页 |
参考文献 | 第109-113页 |
第五章:基于石墨烯为受体的UC-FRET卡那霉素传感器的构建及其在血清中的分析应用 | 第113-128页 |
5.1 引言 | 第113-114页 |
5.2 实验部分 | 第114-118页 |
5.2.1 实验试剂 | 第114-115页 |
5.2.2 实验仪器 | 第115-116页 |
5.2.3 制备油酸修饰的NaYF_4:Yb,Er(OA-UCNPs)纳米颗粒 | 第116页 |
5.2.4 配体交换OA-UCNPs得到HDA-UCNPs | 第116页 |
5.2.5 水热法制备石墨烯 | 第116-117页 |
5.2.6 磺酸化石墨烯的制备 | 第117页 |
5.2.7 卡那霉素适配体与HDA-UCNPs的偶联 | 第117页 |
5.2.8 UC-FRET传感器应用于缓冲溶液和血清中卡那霉素的测定 | 第117-118页 |
5.3 结果与讨论 | 第118-124页 |
5.3.1 UC-FRET卡那霉素适配体传感器的构建原理 | 第118-119页 |
5.3.2 荧光供体HDA-UCNPs和荧光受体磺酸化石墨烯的表征 | 第119-120页 |
5.3.3 UCNPs-aptamer与磺酸化石墨烯之间FRET模型的建立 | 第120-121页 |
5.3.4 UC-FRET传感器应用于缓冲溶液中卡那霉素的测定 | 第121-122页 |
5.3.5 UC-FRET卡那霉素适配体传感器的选择性 | 第122-123页 |
5.3.6 UC-FRET传感器应用于血清中卡那霉素的检测 | 第123-124页 |
5.4 结论 | 第124-125页 |
参考文献 | 第125-128页 |
第六章 总结与展望 | 第128-130页 |
6.1 总结 | 第128-129页 |
6.2 展望 | 第129-130页 |
附录:作者攻读博士学位期间取得的科研成果 | 第130-131页 |
致谢 | 第131页 |