| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 前言 | 第9-14页 |
| 材料与方法 | 第14-23页 |
| 1 材料 | 第14-16页 |
| 1.1 组织标本 | 第14页 |
| 1.2 主要实验试剂 | 第14-15页 |
| 1.3 主要实验仪器 | 第15页 |
| 1.4 主要实验耗材 | 第15页 |
| 1.5 主要溶液配制 | 第15-16页 |
| 2 实验方法 | 第16-23页 |
| 2.1 组织标本的获取 | 第16页 |
| 2.2 组织样本中RNA的提取原理 | 第16页 |
| 2.3 RNA的提取步骤 | 第16-17页 |
| 2.4 将RNA反转录成cDNA | 第17-18页 |
| 2.5 实时荧光定量PCR | 第18-21页 |
| 2.5.1 PCR原理 | 第18-19页 |
| 2.5.2 引物的设计与合成 | 第19页 |
| 2.5.3 实时荧光定量PCR实验步骤 | 第19-20页 |
| 2.5.4 结果分析 | 第20-21页 |
| 2.6 琼脂糖凝胶电泳 | 第21-22页 |
| 2.6.1 琼脂糖凝胶电泳原理 | 第21-22页 |
| 2.6.2 琼脂糖凝胶电泳实验步骤 | 第22页 |
| 2.7 统计学处理 | 第22-23页 |
| 实验结果 | 第23-28页 |
| 1 hsa_circ_0005480 表达于胃癌组织中 | 第23-24页 |
| 2 hsa_circ_0005480 在胃癌组织和癌旁组织中的表达分析 | 第24-25页 |
| 3 hsa_circ_0005480 在胃癌中的表达与临床病理特征的关系 | 第25-27页 |
| 4 hsa_circ_0005480 在临床上诊断胃癌的价值 | 第27-28页 |
| 讨论 | 第28-31页 |
| 结论 | 第31-32页 |
| 参考文献 | 第32-36页 |
| 综述 | 第36-47页 |
| 参考文献 | 第44-47页 |
| 在校期间的研究成果 | 第47-48页 |
| 附录 | 第48-50页 |
| 附录1 中英文缩略词 | 第48-49页 |
| 附录2 胃癌的TNM分期标准（2010版） | 第49-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
