| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5页 |
| 第一章 前言 | 第11-26页 |
| 一、不同生态型芦苇的研究 | 第11-17页 |
| 1.1 芦苇简介 | 第11-12页 |
| 1.2 河西走廊两种芦苇生态型的划分 | 第12页 |
| 1.3 芦苇的抗性研究 | 第12-17页 |
| 1.3.1 结构与生理变化 | 第13-14页 |
| 1.3.2 生物膜结构变化 | 第14-15页 |
| 1.3.3 渗透调节的响应 | 第15-16页 |
| 1.3.4 抗氧化保护体系的响应 | 第16-17页 |
| 二、蛋白质亲/疏水性研究 | 第17-23页 |
| 2.1 "疏水作用"的提出 | 第17页 |
| 2.2 亲/疏水性与氨基酸 | 第17-18页 |
| 2.3 疏水作用与蛋白质的结构 | 第18-22页 |
| 2.3.1 疏水性与蛋白质一级和二级结构 | 第19-20页 |
| 2.3.2 疏水性与蛋白质三级和四级结构 | 第20-21页 |
| 2.3.3 疏水作用与肽链的折叠 | 第21-22页 |
| 2.4 疏水作用与蛋白质的功能 | 第22-23页 |
| 2.5 疏水作用与蛋白质的传送及定位 | 第23页 |
| 三、Rubisco简介 | 第23-26页 |
| 3.1 高等植物中Rubisco结构 | 第24页 |
| 3.2 Rubisco的功能 | 第24-25页 |
| 3.3 芦苇Rubisco的研究 | 第25-26页 |
| 第二章 材料与方法 | 第26-35页 |
| 一、实验材料 | 第26页 |
| 二、仪器药品 | 第26-27页 |
| 2.1 主要仪器设备 | 第26-27页 |
| 2.2 主要试剂 | 第27页 |
| 三、实验方法 | 第27-35页 |
| 3.1 叶片结构观察 | 第27页 |
| 3.2 叶绿素含量的测定 | 第27-28页 |
| 3.3 凯氏定氮法测定总蛋白含量 | 第28页 |
| 3.4 芦苇叶片蛋白质的分步提取 | 第28-29页 |
| 3.5 蛋白质双向电泳分离 | 第29页 |
| 3.6 RNA的制备与检测 | 第29-30页 |
| 3.6.1 Trizol法提取总RNA | 第29-30页 |
| 3.6.2 EASY spin RNA rapid isolation Kit法提取总RNA | 第30页 |
| 3.7 合成cDNA | 第30-31页 |
| 3.8 PCR | 第31-34页 |
| 3.8.1 RT-PCR | 第31-32页 |
| 3.8.2 3′-RACE | 第32页 |
| 3.8.3 5′-TAIL-PCR | 第32-34页 |
| 3.9 测序及序列分析 | 第34-35页 |
| 第三章 实验结果 | 第35-51页 |
| 一、两种生态型芦苇的时片结构 | 第35-36页 |
| 二、两种生态型芦苇叶片中叶绿素含量的差别 | 第36-37页 |
| 三、两种生态型芦苇叶片的蛋白提取 | 第37-39页 |
| 四、两种生态型芦苇时片中总蛋白质组分析 | 第39-43页 |
| 五、可溶性蛋白质组和难溶性蛋白质组分析 | 第43-46页 |
| 六、两种生态型芦苇时片的Rubisco大、小亚基的克隆 | 第46-51页 |
| 6.1 两种生态型芦苇叶片中总RNA的提取 | 第46页 |
| 6.2 两种生态型芦苇叶片中Rubisco大亚基的克隆与测序 | 第46-50页 |
| 6.3 两种生态型芦苇叶片中Rubisco小亚基的克隆与测序 | 第50-51页 |
| 第四章 讨论 | 第51-60页 |
| 一、蛋白质的提取方法 | 第52-53页 |
| 二、双向图谱中同种蛋白质分布于不同位点的原因 | 第53-57页 |
| 2.1 多基因家族的不同Rubisco大亚基蛋白翻译产物的存在 | 第53-54页 |
| 2.2 多基因家族的不同Rubisco小亚基蛋白翻译产物的存在 | 第54-56页 |
| 2.3 Rubisco的蛋白降解 | 第56-57页 |
| 三、芦苇叶片Rubisco的亲/疏水性改变原因分析 | 第57-60页 |
| 3.1 Rubisco的亲/疏水性可能来自于蛋白氨基酸组成差异 | 第57-58页 |
| 3.2 Rubisco的亲/疏水性可能来自于-SH基数差异 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 图版 | 第69页 |
