| 摘要 | 第3-7页 |
| Abstract | 第7-12页 |
| 引言 | 第16-18页 |
| 第一部分 研究背景与立题依据 | 第18-40页 |
| 1.1 枸杞多糖的研究进展 | 第18-37页 |
| 1.1.1 枸杞多糖的提取分离与分析的研究 | 第19-21页 |
| 1.1.2 枸杞多糖的生物活性研究 | 第21-25页 |
| 1.1.3 枸杞多糖的免疫及抗肿瘤作用 | 第25-28页 |
| 1.1.4 多糖的构效关系研究 | 第28页 |
| 1.1.5 枸杞多糖的毒理学和不良反应 | 第28-29页 |
| 1.1.6 肠道粘膜免疫 | 第29-32页 |
| 1.1.7 淋巴细胞的归巢与再循环 | 第32-35页 |
| 1.1.8 细胞迁移 | 第35-37页 |
| 1.2 立题依据 | 第37-40页 |
| 1.2.1 研究假设 | 第37-38页 |
| 1.2.2 研究目的和意义 | 第38-40页 |
| 第二部分 实验研究 | 第40-117页 |
| 第一章 免疫抑制模型的复制 | 第40-60页 |
| 1 试剂、材料和仪器设备 | 第41-42页 |
| 2 实验方法 | 第42-60页 |
| 2.1 环磷酰胺和地塞米松对BALB/c小鼠整体免疫系统的抑制作用 | 第42-47页 |
| 2.2 环磷酰胺和地塞米松对BALB/c小鼠肠道粘膜免疫的抑制作用 | 第47-51页 |
| 2.3 环磷酰胺和地塞米松对DTH小鼠免疫的抑制作用 | 第51-60页 |
| 第二章 中药的选择 | 第60-65页 |
| 1 试剂、材料和仪器设备 | 第60-61页 |
| 2 实验方法 | 第61-65页 |
| 2.1 实验操作 | 第61页 |
| 2.2 数据处理 | 第61页 |
| 2.3 实验结果 | 第61-65页 |
| 第三章 枸杞多糖的分离提取及成分分析 | 第65-84页 |
| 第一节 枸杞多糖的分离提取 | 第65-74页 |
| 3.1 枸杞多糖的分离提取 | 第65-68页 |
| 3.1.1 材料与方法 | 第65-66页 |
| 3.1.2 不同PH水溶液对枸杞多糖产率的影响 | 第66-68页 |
| 3.2 工业酶celluclean对枸杞多糖提取的影响 | 第68-71页 |
| 3.3 不同分子量段枸杞多糖的分级提取 | 第71-73页 |
| 3.4 讨论 | 第73-74页 |
| 第二节 枸杞多糖的成分分析 | 第74-84页 |
| 1 材料与方法 | 第74-84页 |
| 1.1 主要试剂及溶液 | 第74页 |
| 1.2 硫酸-苯酚比色法检测枸杞多糖含量 | 第74-75页 |
| 1.2.1 实验方法 | 第74-75页 |
| 1.2.2 结果 | 第75页 |
| 1.3 枸杞多糖还原性糖的分析 | 第75-76页 |
| 1.3.1 实验方法 | 第76页 |
| 1.3.2 结果 | 第76页 |
| 1.4 枸杞多糖粗脂肪的分析 | 第76-77页 |
| 1.4.1 实验方法 | 第77页 |
| 1.4.2 结果 | 第77页 |
| 1.5 枸杞多糖糖醛酸的分析 | 第77-79页 |
| 1.5.1 实验方法 | 第77页 |
| 1.5.2 结果 | 第77-78页 |
| 1.5.3 稳定性实验、精密度实验、重现性实验 | 第78页 |
| 1.5.4 标准曲线的制作 | 第78-79页 |
| 1.5.5 样品含量测定 | 第79页 |
| 1.6 枸杞多糖蛋白质的含量 | 第79-81页 |
| 1.6.1 蛋白质含量测定 | 第79-80页 |
| 1.6.2 SDS-PAGE | 第80-81页 |
| 1.7 枸杞多糖的HPLC单糖组成测定 | 第81-82页 |
| 1.7.1 实验操作 | 第81-82页 |
| 1.7.2 实验结果 | 第82页 |
| 1.8 讨论 | 第82-84页 |
| 第四章 动物在体实验 | 第84-91页 |
| 1. 试剂、材料和仪器设备 | 第84-85页 |
| 2 实验方法 | 第85-91页 |
| 2.1 免疫增强作用 | 第85页 |
| 2.2 免疫调节作用 | 第85页 |
| 2.3 脏器指数 | 第85-86页 |
| 2.4 肝门静脉血中T,B淋巴细胞的比例及表达α4β 7的比例 | 第86页 |
| 2.5 派氏结中T,B淋巴细胞的比例及α4β7的表达 | 第86页 |
| 2.6 统计分析 | 第86页 |
| 2.7 实验结果 | 第86-89页 |
| 2.8 讨论 | 第89-91页 |
| 第五章 体外实验筛选活性成分 | 第91-117页 |
| 第一节 细胞抑制作用 | 第91-103页 |
| 1 试剂、材料和仪器设备 | 第91页 |
| 2 实验方法 | 第91-103页 |
| 2.1 不同分子量的枸杞多糖对Hela的抑制作用 | 第92页 |
| 2.2 枸杞多糖NO.4对Hela细胞贴壁时间的考察 | 第92页 |
| 2.3 枸杞多糖NO.4对Hela细胞不同细胞浓度的抑制作用 | 第92页 |
| 2.4 不同浓度的枸杞多糖NO.4对Hela的抑制作用 | 第92页 |
| 2.5 不同分子量段枸杞多糖对L929和A549的抑制作用 | 第92-93页 |
| 2.6 多糖细胞毒性试验 | 第93页 |
| 2.7 细胞凋亡作用的考察 | 第93-94页 |
| 2.8 数据处理 | 第94页 |
| 2.9 实验结果 | 第94-101页 |
| 2.10 讨论 | 第101-103页 |
| 第二节 多糖对细胞迁移的影响 | 第103-117页 |
| 1 试剂、材料和仪器设备 | 第103页 |
| 2 实验方法 | 第103-117页 |
| 2.1 细胞浓度和给药剂量 | 第103-104页 |
| 2.2 细胞粘附实验 | 第104页 |
| 2.3 划痕法测定细胞迁移 | 第104页 |
| 2.4 细胞伸展实验 | 第104-105页 |
| 2.5 趋化小室法测定细胞迁移 | 第105页 |
| 2.6 统计分析 | 第105页 |
| 2.7 结果 | 第105-114页 |
| 2.8 讨论 | 第114-117页 |
| 结语 | 第117-119页 |
| 参考文献 | 第119-138页 |
| 附录 | 第138-142页 |
| 在校期间发表论文 | 第142-143页 |
| 致谢 | 第143-144页 |
| 附件1:统计学处理合格证明 | 第144页 |
