| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 符号说明 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-19页 |
| 1.1 研究进展 | 第11-12页 |
| 1.2 FCV生物学特性 | 第12-13页 |
| 1.2.1 病原学 | 第12页 |
| 1.2.2 病毒基因组结构及其编码产物 | 第12-13页 |
| 1.2.3 理化特性 | 第13页 |
| 1.2.4 培养特性 | 第13页 |
| 1.3 FCV流行病学 | 第13-14页 |
| 1.4 诊断及检测方法 | 第14-16页 |
| 1.4.1 ELISA | 第14-15页 |
| 1.4.2 RT-PCR及荧光定量PCR | 第15页 |
| 1.4.3 其它检测方法 | 第15-16页 |
| 1.5 治疗及预防 | 第16-17页 |
| 1.6 目的意义 | 第17-19页 |
| 第二章 猫杯状病毒VP1衣壳蛋白的截短表达及抗原性分析 | 第19-39页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.1 材料 | 第19页 |
| 2.1.2 试剂 | 第19页 |
| 2.1.3 主要实验仪器 | 第19-20页 |
| 2.2 方法 | 第20-30页 |
| 2.2.1 FCV VP1抗原表位预测及保守性分析 | 第20页 |
| 2.2.2 引物设计与合成 | 第20-21页 |
| 2.2.3 FCV VP1原核表达重组质粒的构建 | 第21-26页 |
| 2.2.4 目的蛋白的诱导表达及诱导条件的优化 | 第26-27页 |
| 2.2.5 原核表达产物的检测、纯化及鉴定 | 第27-30页 |
| 2.2.6 VP1截短蛋白的血清学抗原性分析 | 第30页 |
| 2.3 结果 | 第30-36页 |
| 2.3.1 FCV VP1抗原表位预测及保守性分析结果 | 第30-31页 |
| 2.3.2 FCV VP1原核表达重组质粒的构建与鉴定 | 第31-32页 |
| 2.3.3 目的蛋白的诱导表达、鉴定及纯化结果 | 第32-35页 |
| 2.3.4 VP1截短蛋白的血清学抗原性分析结果 | 第35-36页 |
| 2.4 讨论 | 第36-39页 |
| 第三章 猫杯状病毒重组间接ELISA诊断方法的建立 | 第39-51页 |
| 3.1 材料 | 第39页 |
| 3.1.1 血清 | 第39页 |
| 3.1.2 主要试剂、仪器 | 第39页 |
| 3.2 方法 | 第39-43页 |
| 3.2.1 间接ELISA方法操作步骤 | 第39页 |
| 3.2.2 间接ELISA检测条件的优化 | 第39-41页 |
| 3.2.3 阴阳性临界值的确立 | 第41页 |
| 3.2.4 ELISA效果评价分析 | 第41-43页 |
| 3.2.5 临床血清样品的检测 | 第43页 |
| 3.3 结果 | 第43-49页 |
| 3.3.1 间接ELISA检测条件的优化 | 第43-46页 |
| 3.3.2 阴阳性临界值的确立 | 第46-47页 |
| 3.3.3 间接ELISA效果评价分析 | 第47-49页 |
| 3.3.4 临床血清样品的检测 | 第49页 |
| 3.4 讨论 | 第49-51页 |
| 第四章 结论 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-57页 |
| 致谢 | 第57-59页 |
| 附录 | 第59-63页 |
| 个人简历 | 第63页 |
