摘要 | 第6-8页 |
Abstract | 第8-9页 |
1. 绪论 | 第12-17页 |
1.1 引言 | 第12页 |
1.2 木质纤维素的组成及其降解酶类 | 第12-13页 |
1.3 白蚁与其肠道微生物组成的共生体系 | 第13-16页 |
1.3.1 白蚁的分类 | 第13-14页 |
1.3.2 低等白蚁及其肠道微生物对木质纤维素的降解 | 第14-15页 |
1.3.3 高等白蚁及其肠道微生物对木质纤维素的降解 | 第15-16页 |
1.4 研究目的和意义 | 第16-17页 |
2. 实验材料 | 第17-20页 |
2.1 白蚁样品的采集和饲养 | 第17页 |
2.2 培养基 | 第17-18页 |
2.2.1 培养基1 | 第17页 |
2.2.2 培养基2 | 第17页 |
2.2.3 培养基3 | 第17页 |
2.2.4 培养基4 | 第17页 |
2.2.5 分离纯化培养基 | 第17-18页 |
2.2.6 LB培养基(液体) | 第18页 |
2.2.7 LB培养基(固体) | 第18页 |
2.3 实验所用溶液和试剂 | 第18-19页 |
2.4 其他常用试剂 | 第19页 |
2.5 实验仪器和设备 | 第19-20页 |
3. 实验方法 | 第20-27页 |
3.1 白蚁的解剖及肠道菌悬液制备 | 第20-21页 |
3.2 纤维素降解菌的富集培养 | 第21页 |
3.3 筛选纤维素降解菌 | 第21页 |
3.4 筛选的混合菌群扫描电镜观察 | 第21页 |
3.5 混合菌群细菌的16S RRNA基因文库的构建 | 第21-23页 |
3.5.1 混合菌群细菌基因组DNA的提取 | 第21-22页 |
3.5.2 混合菌群细菌16S rRNA基因的扩增引物与反应体系 | 第22页 |
3.5.3 混合菌群细菌16S rRNA基因的扩增条件 | 第22页 |
3.5.4 混合菌群细菌16S rRNA基因文库的构建 | 第22-23页 |
3.5.5 RFLP分析 | 第23页 |
3.6 混合菌群中不同细菌的分离纯化与共培养 | 第23-24页 |
3.6.1 混合菌群不同细菌的分离纯化 | 第23-24页 |
3.6.2 混合菌群中分离菌株的的革兰氏染色和形态观察 | 第24页 |
3.6.3 混合菌系分离菌株的共培养 | 第24页 |
3.7 混合菌群纤维素酶、木聚糖酶活性测定及产酶条件研究 | 第24-26页 |
3.7.1 葡萄糖标准曲线及回归方程 | 第24页 |
3.7.2 粗酶液提取 | 第24-25页 |
3.7.3 采用DNS法检测酶活性 | 第25-26页 |
3.8 利用刚果红平板筛选纤维素降解菌 | 第26-27页 |
3.8.1 富集培养 | 第26页 |
3.8.2 用刚果红平板筛选纤维素降解菌 | 第26页 |
3.8.3 筛选菌株的分离纯化和革兰氏染色观察 | 第26页 |
3.8.4 筛选菌株的16S rRNA基因分析 | 第26页 |
3.8.5 酶活性分析 | 第26-27页 |
4. 实验结果 | 第27-41页 |
4.1 一个能降解纤维素的混合菌群的筛选与初步研究 | 第27-36页 |
4.1.1 能降解纤维素的混合菌群的筛选 | 第27-28页 |
4.1.2 混合菌群扫描电镜观察 | 第28-29页 |
4.1.3 混合菌群细菌16S rRNA基因文库的构建 | 第29-31页 |
4.1.4 混合菌群中细菌的分离纯化与共培养 | 第31-34页 |
4.1.5 混合菌群纤维素酶和木聚糖酶产酶条件研究 | 第34-36页 |
4.2 利用刚果红平板筛选纤维素降解菌 | 第36-41页 |
4.2.1 利用刚果红平板筛选纤维素降解菌 | 第36-38页 |
4.2.2 筛选菌株分离纯化和革兰氏染色观察 | 第38-39页 |
4.2.3 筛选菌株的16S rRNA基因分析 | 第39页 |
4.2.4 XB-7和JH-8酶活性初步分析 | 第39-41页 |
5. 讨论 | 第41-43页 |
参考文献 | 第43-46页 |
致谢 | 第46页 |