摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
1 前言 | 第9-16页 |
1.1 对虾养殖现状 | 第9-11页 |
1.1.1 凡纳滨对虾生物学 | 第9页 |
1.1.2 对虾养殖养殖技术的应用与发展 | 第9-10页 |
1.1.3 对虾养殖病害现状 | 第10-11页 |
1.2 副溶血弧菌 | 第11页 |
1.3 白斑综合症病毒 | 第11-12页 |
1.4 对虾免疫系统 | 第12-15页 |
1.4.1 细胞免疫 | 第12-13页 |
1.4.2 体液免疫 | 第13-15页 |
1.5 研究目的意义、内容 | 第15-16页 |
1.5.1 研究目的意义 | 第15页 |
1.5.2 研究内容 | 第15-16页 |
2 凡纳滨对虾Toll途径进化保守信号介导因子(LvECSIT)在合并感染条件下的免疫应答 | 第16-28页 |
2.1 材料与仪器 | 第17-18页 |
2.1.1 实验材料 | 第17页 |
2.1.2 实验仪器与设备 | 第17-18页 |
2.2 实验方法 | 第18-23页 |
2.2.1 模板制备 | 第18-19页 |
2.2.2 基因克隆 | 第19-20页 |
2.2.3 序列分析 | 第20页 |
2.2.4 WSSV与副溶血弧菌合并感染 | 第20-21页 |
2.2.5 荧光定量Real-Time PCR | 第21页 |
2.2.6 实验试剂配置 | 第21-23页 |
2.3 试验结果 | 第23-26页 |
2.3.1 LvECSIT序列分析 | 第23-24页 |
2.3.2 LvECSIT氨基酸进化树分析 | 第24页 |
2.3.3 LvECSIT的组织表达 | 第24-25页 |
2.3.4 副溶血弧菌与WSSV单独、合并感染对LvECSIT表达量的影响 | 第25-26页 |
2.4 讨论 | 第26-27页 |
2.5 小结 | 第27-28页 |
3 凡纳滨对虾黏着斑激酶(LvFAK)在合并感染条件下的免疫应答 | 第28-38页 |
3.1 材料与仪器 | 第28-29页 |
3.1.1 实验材料 | 第28-29页 |
3.1.2 仪器与设备 | 第29页 |
3.2 实验方法 | 第29-32页 |
3.2.1 模板制备 | 第29页 |
3.2.2 基因克隆 | 第29-31页 |
3.2.3 序列分析 | 第31页 |
3.2.4 WSSV与副溶血弧菌合并感染 | 第31页 |
3.2.5 荧光定量Real-Time PCR | 第31页 |
3.2.6 实验试剂配置 | 第31-32页 |
3.3 试验结果 | 第32-36页 |
3.3.1 FvFAK基因氨基酸序列特征 | 第32-34页 |
3.3.2 FvFAK基因氨基酸进化树分析 | 第34-35页 |
3.3.3 FvFAK的组织表达 | 第35页 |
3.3.4 副溶血弧菌与WSSV单独、合并感染对FvFAK表达量的影响 | 第35-36页 |
3.4 讨论 | 第36-37页 |
3.5 小结 | 第37-38页 |
4 副溶血弧菌与WSSV合并感染对凡纳滨对虾致病性研究 | 第38-51页 |
4.1 材料与仪器 | 第38-39页 |
4.1.1 实验材料 | 第38-39页 |
4.1.2 仪器与设备 | 第39页 |
4.2 实验方法 | 第39-40页 |
4.2.1 WSSV携带量测定 | 第39页 |
4.2.2 酶液制备及酶活测定 | 第39-40页 |
4.2.3 WSSV与副溶血弧菌合并感染 | 第40页 |
4.2.4 实验试剂配置 | 第40页 |
4.2.5 数据分析 | 第40页 |
4.3 试验结果 | 第40-48页 |
4.3.1 副溶血弧菌与WSSV单独、合并感染对凡纳滨对虾死亡情况的影响 | 第40-41页 |
4.3.2 副溶血弧菌对WSSV在凡纳滨对虾体内增值情况的影响 | 第41页 |
4.3.3 副溶血弧菌与WSSV单独、合并感染对凡纳滨对虾鳃组织免疫酶活的影响 | 第41-44页 |
4.3.4 副溶血弧菌与WSSV单独、合并感染对凡纳滨对虾肝胰腺组织免疫酶活的影响 | 第44-46页 |
4.3.5 副溶血弧菌与WSSV单独、合并感染对凡纳滨对虾肌肉组织免疫酶活的影响 | 第46-48页 |
4.4 讨论 | 第48-50页 |
4.5 小结 | 第50-51页 |
5 结论与展望 | 第51-53页 |
5.1 结论 | 第51页 |
5.2 展望 | 第51-53页 |
参考文献 | 第53-65页 |
致谢 | 第65-66页 |
个人简介 | 第66-67页 |
导师简介 | 第67页 |