| 中文摘要 | 第8-14页 |
| 英文摘要 | 第14-21页 |
| 英文缩略词表 | 第22-24页 |
| 前言 | 第24-27页 |
| 第一部分 IL-24 基因对过氧化氢导致HUVEC氧化损伤的保护作用和机制研究 | 第27-74页 |
| 前言 | 第27-31页 |
| 第一节 IL-24 基因对低浓度H_2O_2致HUVECs增殖的作用研究 | 第31-44页 |
| 1 材料 | 第31-32页 |
| 1.1 主要试剂和细胞 | 第31页 |
| 1.2 主要实验仪器设备 | 第31-32页 |
| 2 方法 | 第32-39页 |
| 2.1 抽提IL-24 重组质粒 | 第32-33页 |
| 2.2 复苏和培养HUVECs | 第33-35页 |
| 2.3 实验分组 | 第35-36页 |
| 2.4 质粒转染 | 第36页 |
| 2.5 转染后检测目的基因表达 | 第36-38页 |
| 2.6 划痕实验 | 第38-39页 |
| 2.7 统计方法 | 第39页 |
| 3 结果 | 第39-42页 |
| 3.1 转染IL-24 基因在转染组HUVECs中稳定表达 | 第39-41页 |
| 3.2 划痕实验检测IL-24 对低浓度H_2O_2引起的细胞异常增殖的抑制作用 | 第41-42页 |
| 4 小结 | 第42-44页 |
| 第二节 IL-24 基因对HUVECs氧化损伤的保护机制研究 | 第44-60页 |
| 1 材料 | 第44-46页 |
| 1.1 主要试剂和细胞 | 第44-45页 |
| 1.2 主要实验仪器设备 | 第45-46页 |
| 2 方法 | 第46-51页 |
| 2.1 细胞培养和分组 | 第46页 |
| 2.2 检测HUVECs细胞中转染基因IL-24 的表达 | 第46页 |
| 2.3 CCK-8 检测细胞活性 | 第46-47页 |
| 2.4 Annexin-V/PI联合染色流式细胞术检测细胞凋亡率 | 第47页 |
| 2.5 Western-blot方法检测HUVECs细胞内活化Caspase-3 的表达 | 第47-50页 |
| 2.6 流式细胞术检测HUVEC内ROS含量 | 第50页 |
| 2.7 荧光探针标记法定性观察HUVECs中ROS | 第50页 |
| 2.8 Western-blot检测HUVECs细胞内PI3K/PKB信号通路蛋白的表达 | 第50页 |
| 2.9 统计方法 | 第50-51页 |
| 3 结果 | 第51-58页 |
| 3.1 HUVECs细胞中IL-24 基因转录的检测 | 第51-52页 |
| 3.2 CCK-8 检测细胞存活率 | 第52-53页 |
| 3.3 HUVECs早期和晚期凋亡结果 | 第53-55页 |
| 3.4 Western-blot检测活化Caspase-3 的表达 | 第55-56页 |
| 3.5 HUVECs内ROS含量结果 | 第56-57页 |
| 3.6 HUVECs细胞内PI3K/PKB信号通路蛋白的表达 | 第57-58页 |
| 4 小结 | 第58-60页 |
| 第三节 IL-24 基因对高血压疾病发病相关因素子的作用研究 | 第60-68页 |
| 1 材料 | 第60-62页 |
| 1.1 主要试剂和细胞 | 第60-61页 |
| 1.2 主要实验仪器设备 | 第61-62页 |
| 2 方法 | 第62-63页 |
| 2.1 Real-time PCR检测细胞中高血压相关因子表达 | 第62-63页 |
| 2.2 Western-blot检测细胞中高血压相关蛋白含量变化 | 第63页 |
| 2.3 统计方法 | 第63页 |
| 3 结果 | 第63-67页 |
| 3.1 Real-time PCR检测细胞中高血压相关因子表达水平的变化 | 第64-65页 |
| 3.2 Western-blot检测细胞中高血压相关因子蛋白表达水平的变化 | 第65-67页 |
| 4 小结 | 第67-68页 |
| 讨论 | 第68-74页 |
| 第二部分 IL-24 与高血压疾病发病和治疗相关性的研究 | 第74-90页 |
| 前言 | 第74-75页 |
| 第一节 高血压大鼠模型建立与IL-24 基因表达的相关性研究 | 第75-81页 |
| 1 动物和材料 | 第75-76页 |
| 1.1 主要试剂和动物 | 第75-76页 |
| 1.2 主要实验仪器设备 | 第76页 |
| 2 方法 | 第76-78页 |
| 2.1 动物分组和干预方法 | 第76-77页 |
| 2.2 Real-time PCR检测IL-24 基因表达含量的变化 | 第77页 |
| 2.3 Western-blot方法检测IL-24 基因蛋白表达含量 | 第77-78页 |
| 2.4 统计方法 | 第78页 |
| 3 结果 | 第78-80页 |
| 3.1 高血压模型建立成功 | 第78-79页 |
| 3.2 Real-time PCR检测IL-24 基因表达含量的变化 | 第79页 |
| 3.3 Western-blot方法检测IL-24 表达蛋白含量 | 第79-80页 |
| 4 小结 | 第80-81页 |
| 第二节 高血压大鼠模型药物降压对IL-24 基因表达的影响 | 第81-87页 |
| 1 动物和材料 | 第81-82页 |
| 1.1 主要试剂和动物 | 第81-82页 |
| 1.2 主要实验仪器设备 | 第82页 |
| 2 方法 | 第82-84页 |
| 2.1 动物分组和干预方法 | 第82-83页 |
| 2.2 Real-time PCR检测IL-24 基因RNA表达含量 | 第83页 |
| 2.3 Western-blot检测IL-24 基因蛋白含量 | 第83页 |
| 2.4 统计方法 | 第83-84页 |
| 3 结果 | 第84-86页 |
| 3.1 高血压模型构建成功 | 第84页 |
| 3.2 RNA和蛋白水平分别检测大鼠降压治疗后IL-24 在组织的表达情况 | 第84-86页 |
| 4 小结 | 第86-87页 |
| 讨论 | 第87-90页 |
| 参考文献 | 第90-101页 |
| 综述 | 第101-113页 |
| 参考文献 | 第108-113页 |
| 致谢 | 第113-115页 |
| 个人简历 | 第115-116页 |
