| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-12页 |
| 第一章 前言 | 第12-23页 |
| ·酶法制备植物多肽 | 第13-14页 |
| ·植物多肽抗氧化性的研究 | 第14-16页 |
| ·清除自由基试验 | 第14-15页 |
| ·还原能力试验 | 第15页 |
| ·抑制亚油酸过氧化试验 | 第15-16页 |
| ·螯合金属离子试验 | 第16页 |
| ·植物多肽的降血压活性 | 第16-19页 |
| ·紫外分光光度计法 | 第17页 |
| ·可见光分光光度计法 | 第17-18页 |
| ·高效液相色谱法 | 第18页 |
| ·高效毛细管电泳法 | 第18-19页 |
| ·植物多肽的分离纯化 | 第19-21页 |
| ·膜分离技术 | 第19页 |
| ·凝胶过滤色谱(GFC) | 第19-20页 |
| ·离子交换层析 | 第20页 |
| ·RP–HPLC | 第20-21页 |
| ·前景展望 | 第21页 |
| ·本文主要研究内容 | 第21-23页 |
| 第二章 单酶和双酶制取菜籽蛋白抗氧化肽的初步研究 | 第23-29页 |
| ·材料与方法 | 第23-25页 |
| ·材料与试剂 | 第23页 |
| ·仪器与设备 | 第23页 |
| ·实验方法 | 第23-25页 |
| ·结果与讨论 | 第25-28页 |
| ·加拿大菜籽粕主要成分分析 | 第25-26页 |
| ·单酶和双酶对菜籽蛋白的水解 | 第26-27页 |
| ·单酶和双酶菜籽蛋白水解物清除DPPH 自由基的能力 | 第27-28页 |
| ·单酶和双酶菜籽蛋白水解物的还原能力 | 第28页 |
| ·本章小结 | 第28-29页 |
| 第三章 Na_2SO_3前处理对菜籽蛋白酶水解物抗氧化活性的影响 | 第29-35页 |
| ·材料与方法 | 第29-31页 |
| ·材料及试剂 | 第29页 |
| ·试验仪器 | 第29页 |
| ·实验方法 | 第29-31页 |
| ·结果与讨论 | 第31-33页 |
| ·Na_2SO_3 前处理对中性蛋白酶水解菜籽粕的影响 | 第31页 |
| ·Na_2SO_3 前处理对菜籽蛋白酶水解物清除DPPH 自由基活性的影响 | 第31-32页 |
| ·Na_2SO_3 前处理对菜籽蛋白酶水解物还原能力的影响 | 第32-33页 |
| ·Na_2SO_3 前处理对菜籽蛋白酶水解物抑制亚油酸氧化的影响 | 第33页 |
| ·本章小结 | 第33-35页 |
| 第四章 菜籽蛋白不同双酶组合水解物的抗氧化活性研究 | 第35-40页 |
| ·材料与方法 | 第35-36页 |
| ·材料与试剂 | 第35页 |
| ·仪器与设备 | 第35页 |
| ·实验方法 | 第35-36页 |
| ·结果与讨论 | 第36-39页 |
| ·双酶水解菜籽粕的速率曲线 | 第36-37页 |
| ·菜籽粕双酶水解物清除DPPH 自由基的活性 | 第37-38页 |
| ·菜籽粕双酶水解物的还原能力 | 第38-39页 |
| ·菜籽粕双酶水解物对亚油酸氧化的抑制作用 | 第39页 |
| ·本章小结 | 第39-40页 |
| 第五章 菜籽蛋白双酶水解物的分离及抗氧化活性研究 | 第40-45页 |
| ·材料与方法 | 第40-41页 |
| ·材料与试剂 | 第40页 |
| ·仪器与设备 | 第40页 |
| ·实验方法 | 第40-41页 |
| ·结果与讨论 | 第41-44页 |
| ·膜分离菜籽蛋白双酶水解物及分离后的水解物抗氧化活性研究 | 第41-43页 |
| ·凝胶层析测定及分离菜籽粕双酶水解物 | 第43-44页 |
| ·凝胶柱分离组分清除DPPH 自由基活性 | 第44页 |
| ·本章小结 | 第44-45页 |
| 第六章 酶法制取菜籽蛋白降血压肽 | 第45-50页 |
| ·材料与方法 | 第45-46页 |
| ·材料 | 第45页 |
| ·试剂及仪器 | 第45页 |
| ·实验方法 | 第45-46页 |
| ·结果与分析 | 第46-48页 |
| ·苏油Ⅰ号菜籽粕的主要组分含量 | 第46-47页 |
| ·碱性蛋白酶水解菜籽蛋白的水解度分析 | 第47页 |
| ·酶水解时间对水解物抑制 ACE 活性的影响 | 第47-48页 |
| ·菜籽蛋白酶水解物抑制 ACE 活性与卡托普利的比较 | 第48页 |
| ·本章小结 | 第48-50页 |
| 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-57页 |
| 攻读硕士学位期间研究成果 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
