| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-14页 |
| 图目录 | 第14-16页 |
| 表目录 | 第16-17页 |
| 1 绪论 | 第17-34页 |
| ·引言 | 第17页 |
| ·非编码小RNA 的分类 | 第17-20页 |
| ·转移RNA | 第18页 |
| ·核仁RNA | 第18页 |
| ·核RNA | 第18-19页 |
| ·噬菌体和病毒RNA | 第19页 |
| ·小干扰RNA | 第19-20页 |
| ·microRNA | 第20页 |
| ·microRNA 的发现及生成机制 | 第20-23页 |
| ·microRNA 的发现历程 | 第20-21页 |
| ·microRNA 的生物形成机制 | 第21-23页 |
| ·microRNA 的调控方式 | 第23-27页 |
| ·microRNA 调控方式与siRNA 的异同 | 第24-27页 |
| ·microRNA 与肿瘤 | 第27-30页 |
| ·microRNA 通过负调控致癌基因或抑癌基因调控肿瘤生物特性 | 第28页 |
| ·microRNA 与肿瘤细胞增殖和凋亡 | 第28-29页 |
| ·microRNA 与肿瘤的治疗 | 第29-30页 |
| ·miRNA 与神经胶质瘤 | 第30页 |
| ·MicroRNA 与肿瘤干细胞 | 第30-32页 |
| ·肿瘤干细胞及其产生机制 | 第30-31页 |
| ·miRNA 与肿瘤干细胞调控的关系 | 第31-32页 |
| ·miR-26b 和miR-125b的研究现状 | 第32-33页 |
| ·本研究的目的及意义 | 第33-34页 |
| 2 miR-26b 在神经胶质瘤中的表达特性研究 | 第34-45页 |
| ·材料与方法 | 第34-39页 |
| ·实验材料 | 第34-35页 |
| ·酶及主要试剂 | 第34页 |
| ·主要仪器设备 | 第34-35页 |
| ·实验方法 | 第35-39页 |
| ·结果与分析 | 第39-43页 |
| ·神经胶质瘤病理分级结果及WHO 分级 | 第39-40页 |
| ·RNA 质量检测 | 第40-42页 |
| ·Real-time PCR 分析miR-26b 在不同恶性程度胶质瘤样本中的表达情况 | 第42-43页 |
| ·讨论 | 第43-44页 |
| ·本章结论 | 第44-45页 |
| 3 MicoRNA-26b 调控胶质瘤细胞增殖、侵袭和血管生成拟态的分子机制 | 第45-81页 |
| ·材料与方法 | 第45-63页 |
| ·实验材料 | 第45-46页 |
| ·实验方法 | 第46-63页 |
| ·实验结果 | 第63-77页 |
| ·miR-26b 转染效率检测 | 第63-64页 |
| ·miR-26b 对胶质瘤细胞增殖的影响 | 第64-66页 |
| ·miR-26b 对胶质瘤细胞迁移和侵袭能力的影响 | 第66-68页 |
| ·miR-26b 直接调控的靶基因分析 | 第68-77页 |
| ·讨论 | 第77-79页 |
| ·本章结论 | 第79-81页 |
| 4 microRNA-125b在神经胶质瘤中的表达特性及对胶质瘤细胞增殖、凋亡的影响 | 第81-104页 |
| ·材料与方法 | 第81-88页 |
| ·实验材料 | 第81-82页 |
| ·实验方法 | 第82-88页 |
| ·实验结果 | 第88-101页 |
| ·miR-125b在胶质瘤组织和细胞中的表达情况 | 第88-89页 |
| ·在神经胶质瘤细胞中过表达miR-125b促进细胞增殖 | 第89-92页 |
| ·miR-125b对胶质瘤细胞周期的影响 | 第92-93页 |
| ·miR-125b对胶质瘤细胞凋亡的影响 | 第93-96页 |
| ·miR-125b对胶质瘤细胞集落形成的影响 | 第96-97页 |
| ·miR-125b对神经胶质瘤细胞化疗药物ACNU 敏感性影响 | 第97-98页 |
| ·miR-125b缺失表达增强胶质瘤细胞ACNU 诱导的细胞凋亡 | 第98-101页 |
| ·讨论 | 第101-103页 |
| ·本章结论 | 第103-104页 |
| 5 micoRNA-125b调控神经胶质瘤细胞增殖和凋亡的分子机制 | 第104-130页 |
| ·材料与方法 | 第104-117页 |
| ·实验材料 | 第104-105页 |
| ·实验方法 | 第105-117页 |
| ·结果 | 第117-128页 |
| ·miR-125b慢病毒表达载体的稳定转染 | 第117-119页 |
| ·Real-time PCR 检测稳定转染miR-125b表达载体和miR-125b干扰载体的U87MG细胞中miR-125b的表达情况 | 第119-120页 |
| ·p53 干扰载体效率检测 | 第120-121页 |
| ·抑制miR-125b的表达引起细胞凋亡相关基因的表达变化 | 第121-122页 |
| ·p53 在miR-125b缺失的细胞中特异性激活 | 第122-124页 |
| ·miR-125b缺失诱导的细胞凋亡不依赖于p53 的激活 | 第124-126页 |
| ·miR-125b调控p38MAPK 表达 | 第126-127页 |
| ·p38MAPK 和p53 表达同时抑制时由miR-125b缺失引起的细胞凋亡 | 第127-128页 |
| ·讨论 | 第128-129页 |
| ·本章结论 | 第129-130页 |
| 6 miRNA 在胶质瘤干细胞中的差异表达及miR-125b在调控胶质瘤干细胞增殖和分化中的作用 | 第130-146页 |
| ·材料与方法 | 第130-134页 |
| ·实验材料 | 第130页 |
| ·实验方法 | 第130-134页 |
| ·结果 | 第134-143页 |
| ·肿瘤干细胞的形成和鉴定 | 第134-136页 |
| ·microRNAs 在U87MG 细胞和脑瘤干细胞中的差异性表达 | 第136-138页 |
| ·miR-125b和let-7a/c 在U87MG 细胞和脑瘤干细胞中的表达检测 | 第138-140页 |
| ·miR-125b抑制脑瘤干细胞样细胞的增殖 | 第140-141页 |
| ·miR-125b调控脑瘤干细胞样细胞分化 | 第141-143页 |
| ·讨论 | 第143-145页 |
| ·本章结论 | 第145-146页 |
| 7 结论和创新点 | 第146-148页 |
| 8 参考文献 | 第148-159页 |
| 9 发表文章 | 第159-160页 |
| 10 致谢 | 第160页 |
