摘要 | 第2-3页 |
Abstract | 第3-4页 |
缩略词表 | 第5-9页 |
第一章 文献综述 | 第9-23页 |
1 贝母研究概况 | 第9-11页 |
1.1 基原考证 | 第9页 |
1.2 植物形态特征及生物学特性 | 第9-10页 |
1.3 地理分布 | 第10页 |
1.4 化学成分及药理学研究 | 第10-11页 |
1.5 资源现状及野生资源保护方式 | 第11页 |
2 植物组织培养的研究概况 | 第11-17页 |
2.1 植物组织培养的发展及现状 | 第11-12页 |
2.2 植物组织培养在实践中的应用 | 第12-14页 |
2.3 贝母属植物组织培养研究概况 | 第14-15页 |
2.4 影响贝母组织培养的因素 | 第15-17页 |
3 贝母鳞茎打破休眠的研究进展 | 第17-22页 |
3.1 鳞茎打破休眠概述 | 第17-18页 |
3.2 鳞茎休眠的调控研究 | 第18-19页 |
3.3 低温解除休眠中贝母鳞茎生理生化变化 | 第19-22页 |
4.技术路线 | 第22-23页 |
第二章 伊贝母种胚的离体培养 | 第23-30页 |
1 材料与方法 | 第23-25页 |
1.1 试验材料 | 第23页 |
1.2 试验方法 | 第23-24页 |
1.3 相关统计公式 | 第24页 |
1.4 数据分析 | 第24-25页 |
2 结果与分析 | 第25-28页 |
2.1 不同温度条件对伊贝母种胚诱导的影响 | 第25页 |
2.2 不同光照时间对伊贝胚诱导的影响 | 第25-26页 |
2.3 不同激素组合对伊贝母种胚诱导的影响 | 第26-27页 |
2.4 不同激素组合对不定芽继代培养的影响 | 第27页 |
2.5 无菌苗的生根培养 | 第27-28页 |
3 结论与讨论 | 第28-30页 |
第三章 甘肃贝母鳞茎的组织培养 | 第30-42页 |
1 材料与方法 | 第30-33页 |
1.1 试验材料 | 第30页 |
1.2 试验方法 | 第30-31页 |
1.3 培养基 | 第31-32页 |
1.4 培养条件 | 第32-33页 |
1.5 数据处理 | 第33页 |
2 结果与分析 | 第33-40页 |
2.1 不同灭菌方式对甘肃贝母鳞茎诱导的影响 | 第33-34页 |
2.2 不同植物生长素NAA、IAA对甘肃贝母鳞茎初代诱导的影响 | 第34-36页 |
2.3 不同激素组合对不定芽继代培养的影响 | 第36页 |
2.4 不同温度和光照时间对甘肃贝母组织培养的影响 | 第36-37页 |
2.5 不同温度和光照时间对甘肃贝母组织培养的影响 | 第37-40页 |
3 讨论与结论 | 第40-42页 |
第四章 外源GA_3、ABA处理对甘肃贝母鳞茎休眠的促抑效应 | 第42-54页 |
1 材料与方法 | 第42-43页 |
1.1 试验材料 | 第42页 |
1.2 试验设计 | 第42-43页 |
2 测定指标与方法 | 第43-44页 |
2.1 冷藏期间甘肃贝母鳞茎解除休眠时间的测定 | 第43页 |
2.2 冷藏期间甘肃贝母鳞茎碳水化合物的测定 | 第43页 |
2.3 冷藏期间甘肃贝母可溶性蛋白含量的测定 | 第43页 |
2.4 冷藏期间甘肃贝母鳞茎抗氧化性酶与酚类物质合成相关酶活性的测定 | 第43-44页 |
2.5 数据处理 | 第44页 |
3 结果与分析 | 第44-51页 |
3.1 外源GA_3、ABA处理对冷藏期间甘肃贝母鳞茎解除休眠时间的确定 | 第44-46页 |
3.2 外源GA_3、ABA对甘肃贝母鳞茎冷藏期间碳水化合物的影响 | 第46-47页 |
3.3 外源GA_3、ABA对甘肃贝母鳞茎冷藏期间可溶性蛋白质含量的影响 | 第47-48页 |
3.4 外源GA_3、ABA对甘肃贝母鳞茎冷藏期间抗氧化性酶与酚类物质合成相关酶活性的影响 | 第48-51页 |
4 讨论与结论 | 第51-54页 |
4.1 甘肃贝母鳞茎内顶芽萌发的形态指标与解除休眠的关系 | 第51页 |
4.2 甘肃贝母鳞茎碳水化合物变化与解除休眠的关系 | 第51-52页 |
4.3 甘肃贝母鳞茎内可溶性蛋白含量的变化与解除休眠的关系 | 第52页 |
4.4 甘肃贝母鳞茎内抗氧化性酶解除休眠的关系 | 第52-53页 |
4.5 甘肃贝母鳞茎PPO、PAL活性与休眠解除的关系 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-62页 |
附图 | 第62-66页 |
致谢 | 第66-67页 |
作者简介 | 第67-68页 |
导师简介 | 第68-69页 |