| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-29页 |
| 1.1 莠去津概述 | 第12-16页 |
| 1.1.1 莠去津的结构和理化性质 | 第12-13页 |
| 1.1.2 莠去津的使用价值 | 第13页 |
| 1.1.3 莠去津的作用机理 | 第13-14页 |
| 1.1.4 环境中莠去津的使用现状 | 第14-15页 |
| 1.1.5 环境中莠去津的危害 | 第15-16页 |
| 1.2 小球藻概述 | 第16-18页 |
| 1.2.1 生物学特征 | 第16-17页 |
| 1.2.2 小球藻的营养价值 | 第17页 |
| 1.2.3 在环境科学研究中的价值 | 第17-18页 |
| 1.3 农药对藻类的作用 | 第18-20页 |
| 1.3.1 农药对藻类生长的影响 | 第18-19页 |
| 1.3.2 农药对藻类的生物膜和光合作用的干扰 | 第19-20页 |
| 1.4 实时荧光定量PCR技术 | 第20-23页 |
| 1.4.1 技术原理 | 第21-22页 |
| 1.4.2 实验条件的确定 | 第22页 |
| 1.4.3 应用现状与展望 | 第22-23页 |
| 1.5 本课题的研究内容和意义 | 第23页 |
| 参考文献 | 第23-29页 |
| 第二章 生化水平上的毒性终点分析 | 第29-51页 |
| 引言 | 第29页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第29-33页 |
| 2.1.1 实验试剂 | 第29-31页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第31-32页 |
| 2.1.4 培养条件 | 第32-33页 |
| 2.2 实验方法 | 第33-36页 |
| 2.2.1 实验设计 | 第33页 |
| 2.2.2 藻细胞计数 | 第33页 |
| 2.2.3 EC_(50)值的计算 | 第33-34页 |
| 2.2.4 藻细胞的收集与破碎 | 第34页 |
| 2.2.5 考马斯亮蓝法测定蛋白浓度 | 第34-35页 |
| 2.2.6 SOD活性的测定 | 第35页 |
| 2.2.7 POD活性的测定 | 第35页 |
| 2.2.8 MDA含量的变化 | 第35-36页 |
| 2.2.9 数据处理和分析 | 第36页 |
| 2.3 实验结果 | 第36-48页 |
| 2.3.1 葡萄糖对蛋白核小球藻生长的影响 | 第36-37页 |
| 2.3.2 莠去津对蛋白核小球藻生长的影响 | 第37-41页 |
| 2.3.3 自养和混合营养条件下EC_(50)值的确定 | 第41-42页 |
| 2.3.4 莠去津处理72小时,自养和混合营养条件下蛋白核小球藻抗氧化酶活性的变化 | 第42-44页 |
| 2.3.5 莠去津处理72小时,自养和混合营养条件下蛋白核小球藻MDA含量的变化 | 第44-45页 |
| 2.3.6 莠去津处理48小时,自养和混合营养条件下蛋白核小球藻抗氧化酶活性的变化 | 第45-47页 |
| 2.3.7 莠去津处理48小时,自养和混合营养条件下蛋白核小球藻MDA含量的变化 | 第47-48页 |
| 2.4 讨论与结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-51页 |
| 第三章 分子水平上的毒性终点分析 | 第51-65页 |
| 引言 | 第51页 |
| 3.1 实验材料与仪器 | 第51-53页 |
| 3.1.1 实验试剂 | 第51-52页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第52-53页 |
| 3.2 实验方法 | 第53-58页 |
| 3.2.1 藻细胞的收集 | 第53页 |
| 3.2.2 总RNA的抽提纯化 | 第53-54页 |
| 3.2.3 第一链cDNA的合成 | 第54-55页 |
| 3.2.4 PCR扩增目的基因和内参基因 | 第55-56页 |
| 3.2.5 PCR产物的检验 | 第56页 |
| 3.2.6 实时荧光定量PCR分析 | 第56-57页 |
| 3.2.7 基因相对表达丰度的计算 | 第57页 |
| 3.2.8 数据处理和分析 | 第57-58页 |
| 3.3 实验结果 | 第58-62页 |
| 3.3.1 莠去津处理72小时,自养和混合营养条件下蛋白核小球藻基因表达丰度的变化 | 第58-61页 |
| 3.3.2 莠去津处理48小时,自养条件下蛋白核小球藻基因表达丰度的变化 | 第61-62页 |
| 3.4 讨论与结论 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-65页 |
| 论文的创新之处 | 第65-66页 |
| 硕士期间发表的论文 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
