致谢 | 第5-8页 |
摘要 | 第8-10页 |
Abstract | 第10-11页 |
第一章 文献综述 | 第16-40页 |
1.1 引言 | 第16-17页 |
1.2 天然活性物质的结构和溶解特性 | 第17-26页 |
1.2.1 天然活性物质的结构与来源 | 第17页 |
1.2.2 天然活性物质的溶解特性 | 第17-21页 |
1.2.3 天然活性物质的增溶方法研究进展 | 第21-26页 |
1.2.3.1 天然活性物质提取过程中的增溶研究 | 第22-23页 |
1.2.3.2 纯天然活性物质利用过程中的增溶研究 | 第23-26页 |
1.3 离子液体的物性及其在天然活性物质溶解和分离上的应用 | 第26-38页 |
1.3.1 离子液体的物性及其与溶质分子间相互作用 | 第26-31页 |
1.3.1.1 离子液体的结构和种类 | 第26-27页 |
1.3.1.2 离子液体的多重溶剂化作用 | 第27-29页 |
1.3.1.3 离子液体的纳米聚集结构 | 第29-31页 |
1.3.2 离子液体在天然活性物质溶解和分离上的研究进展 | 第31-38页 |
1.3.2.1 溶解药物和天然药物活性分子 | 第31-33页 |
1.3.2.2 溶解纤维素和木质素 | 第33-34页 |
1.3.2.3 溶解生物活性大分子 | 第34-35页 |
1.3.2.4 提取和分离天然活性物质 | 第35-38页 |
1.4 本文的研究思路 | 第38-40页 |
第二章 基于纳米结构离子液体的自组装诱导的药物溶解策略及其对典型药物的溶解特性 | 第40-70页 |
2.1 引言 | 第40页 |
2.2 实验部分 | 第40-48页 |
2.2.1 实验试剂 | 第40-43页 |
2.2.2 实验仪器 | 第43页 |
2.2.3 实验方法 | 第43-48页 |
2.2.3.1 LCC-ILs的合成 | 第43-45页 |
2.2.3.2 LCC-ILs的物化性质表征 | 第45-46页 |
2.2.3.3 溶解度测定方法 | 第46-47页 |
2.2.3.4 溶质与LCC-ILs的分离方法 | 第47页 |
2.2.3.5 LCC-ILs的纳米聚集结构表征 | 第47页 |
2.2.3.6 氢键与微观结构表征 | 第47-48页 |
2.3 结果与讨论 | 第48-68页 |
2.3.1 LCC-ILs的物化性质 | 第48-50页 |
2.3.2 LCC-ILs的纳米聚集结构 | 第50-51页 |
2.3.3 药物分子在溶剂中的溶解物性 | 第51-62页 |
2.3.3.1 胆固醇在有机溶剂和常规室温离子液体中的溶解度 | 第51-54页 |
2.3.3.2 胆固醇溶解度比较 | 第54-55页 |
2.3.3.3 胆固醇在LCC-ILs中的溶解度 | 第55-57页 |
2.3.3.4 典型的甾醇类、芳基脂肪酸类等药物在LCC-ILs中的溶解物性 | 第57-59页 |
2.3.3.5 药物分子在LCC-IL水及PBS溶液中的溶解度 | 第59-61页 |
2.3.3.6 抗溶剂法分离LCC-ILs和药物分子 | 第61-62页 |
2.3.4 胆固醇在LCC-ILs中的溶解机理 | 第62-68页 |
2.3.4.1 LCC-ILs与胆固醇的相互作用 | 第63-64页 |
2.3.4.2 LCC-ILs与胆固醇体系的微观结构及自组装机理 | 第64-68页 |
2.4 本章小结 | 第68-70页 |
第三章 支链羧酸离子液体的合成及其对胆固醇的溶解性能研究 | 第70-94页 |
3.1 引言 | 第70页 |
3.2 实验部分 | 第70-75页 |
3.2.1 实验试剂 | 第70-71页 |
3.2.2 实验仪器 | 第71-72页 |
3.2.3 实验方法 | 第72-75页 |
3.2.3.1 BCC-ILs的合成与表征 | 第72-75页 |
3.2.3.2 溶解度测定及分离方法 | 第75页 |
3.2.3.3 氢键与微观结构表征 | 第75页 |
3.3 结果与讨论 | 第75-92页 |
3.3.1 BCC-ILs的物化性质 | 第76-82页 |
3.3.1.1 BCC-ILs的熔点、玻璃化温度与热稳定性 | 第76-79页 |
3.3.1.2 BCC-ILs的粘度 | 第79-81页 |
3.3.1.3 BCC-ILs的氢键碱性β和偶极性/可极化性π~* | 第81-82页 |
3.3.2 BCC-ILs对胆固醇的溶解特性 | 第82-86页 |
3.3.2.1 胆固醇在BCC-ILs中的溶解度 | 第82-85页 |
3.3.2.2 抗溶剂法分离溶质和BCC-ILs | 第85-86页 |
3.3.3 胆固醇在BCC-ILs中的溶解机理 | 第86-92页 |
3.3.3.1 LCC-ILs与胆固醇的相互作用 | 第87-88页 |
3.3.3.2 BCC-ILs与胆固醇的微观结构 | 第88-92页 |
3.4 本章小结 | 第92-94页 |
第四章 长链羧酸离子液体水溶液增溶与分离疏水性天然活性物质 | 第94-115页 |
4.1 引言 | 第94-95页 |
4.2 实验部分 | 第95-99页 |
4.2.1 实验试剂 | 第95-96页 |
4.2.2 实验仪器 | 第96-97页 |
4.2.3 实验方法 | 第97-99页 |
4.2.3.1 水/离子液体体系的构建 | 第97页 |
4.2.3.2 水/离子液体溶液的物化性质表征 | 第97-98页 |
4.2.3.3 溶解度测定 | 第98页 |
4.2.3.4 生育酚固液萃取实验 | 第98页 |
4.2.3.5 分析条件 | 第98-99页 |
4.3 结果与讨论 | 第99-113页 |
4.3.1 水/LCC-ILs溶液的溶剂特性 | 第99-101页 |
4.3.1.1 水/LCC-ILs溶液的氢键碱性β和偶极性/可极化性π~* | 第99-100页 |
4.3.1.2 水/LCC-ILs溶液的粘度 | 第100-101页 |
4.3.2 α-生育酚在LCC-ILs水溶液及其他溶剂中溶解度比较 | 第101-103页 |
4.3.3 α-生育酚在LCC-IL水溶液中的溶解机理 | 第103-105页 |
4.3.4 水/LCC-IL溶液对α-生育酚的溶解性能 | 第105-108页 |
4.3.4.1 LCC-ILs浓度对α-生育酚溶解度的影响 | 第105页 |
4.3.4.2 LCC-ILs烷基链长度对α-生育酚在混合水溶液中溶解度的影响 | 第105-108页 |
4.3.4.3 温度对α-生育酚溶解度的影响 | 第108页 |
4.3.5 典型疏水性天然活性物质在LCC-ILs水溶液中的溶解性能 | 第108-110页 |
4.3.6 离子液体水溶液对大豆粉中的生育酚的萃取研究 | 第110-113页 |
4.3.6.1 LCC-ILs浓度对生育酚萃取效果的影响 | 第110-111页 |
4.3.6.2 固液比对生育酚萃取效果的影响 | 第111页 |
4.3.6.3 萃取时间对生育酚萃取效果的影响 | 第111-112页 |
4.3.6.4 不同水溶液对生育酚的萃取效果比较 | 第112-113页 |
4.4 本章小结 | 第113-115页 |
第五章 长链羧酸离子液体分子溶剂溶液对胆固醇的增溶与自组装特性研究 | 第115-140页 |
5.1 引言 | 第115页 |
5.2 实验部分 | 第115-118页 |
5.2.1 实验试剂 | 第115-116页 |
5.2.2 实验仪器 | 第116-117页 |
5.2.3 实验方法 | 第117-118页 |
5.2.3.1 分子溶剂/离子液体溶液的粘度表征 | 第117页 |
5.2.3.2 溶解度测定 | 第117-118页 |
5.2.3.3 氢键与自组装结构表征 | 第118页 |
5.3 结果与讨论 | 第118-138页 |
5.3.1 分子溶剂/LCC-IL溶液体系的传递特性 | 第118-122页 |
5.3.2 胆固醇在分子溶剂/离子液体溶液中的溶解度 | 第122-129页 |
5.3.2.1 分子溶剂浓度对溶解度的影响 | 第123-124页 |
5.3.2.2 分子溶剂种类对溶解度的影响 | 第124-126页 |
5.3.2.3 温度对溶解度的影响 | 第126-127页 |
5.3.2.4 烷基链长度对溶解度的影响 | 第127-129页 |
5.3.3 胆固醇在分子溶剂/LCC-IL溶液中的相互作用 | 第129-132页 |
5.3.4 分子溶剂/LCC-IL溶液与胆固醇的三元体系的微观结构 | 第132-138页 |
5.3.4.1 胆固醇浓度对微观聚集结构的影响 | 第132-134页 |
5.3.4.2 分子溶剂浓度对微观聚集结构的影响 | 第134-135页 |
5.3.4.3 分子溶剂种类对微观聚集结构的影响 | 第135-138页 |
5.4 本章小结 | 第138-140页 |
第六章 结论 | 第140-143页 |
附录A 活性分子在纯离子液体中的溶解度 | 第143-145页 |
附录B 分子溶剂/离子液体溶液粘度性质 | 第145-148页 |
附录C 胆固醇在分子溶剂/离子液体溶液中的溶解度 | 第148-153页 |
参考文献 | 第153-173页 |
作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第173-174页 |