| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩略词表 | 第14-16页 |
| 第一章 绪论 | 第16-38页 |
| 1.1 引言 | 第16页 |
| 1.2 生物膜 | 第16-24页 |
| 1.2.1 生物膜的组成 | 第17-20页 |
| 1.2.2 生物膜的特性 | 第20-22页 |
| 1.2.3 生物膜的常见模型形式 | 第22-24页 |
| 1.2.4 生物膜动态 | 第24页 |
| 1.3 膜蛋白 | 第24-31页 |
| 1.3.1 膜蛋白的分类 | 第25-26页 |
| 1.3.2 膜蛋白-磷脂膜相互作用 | 第26页 |
| 1.3.3 膜蛋白动态 | 第26-28页 |
| 1.3.4 常用研究方法 | 第28-31页 |
| 1.3.4.1 X-射线晶体衍射 | 第29页 |
| 1.3.4.2 原子力显微镜 | 第29页 |
| 1.3.4.3 圆二色谱 | 第29-30页 |
| 1.3.4.4 荧光光谱 | 第30页 |
| 1.3.4.5 核磁共振 | 第30页 |
| 1.3.4.6 傅里叶变换红外光谱 | 第30-31页 |
| 1.4 芳香性残基 | 第31-35页 |
| 1.4.1 芳香性残基的作用 | 第31-32页 |
| 1.4.2 外周膜蛋白中芳香性残基的作用 | 第32-34页 |
| 1.4.3 跨膜蛋白中芳香性残基的作用 | 第34-35页 |
| 1.5 立题依据和主要工作 | 第35-38页 |
| 1.5.1 立题依据 | 第35-36页 |
| 1.5.2 主要工作 | 第36-38页 |
| 第二章 傅里叶变换红外光谱技术概述 | 第38-48页 |
| 2.1 傅里叶变换红外光谱仪简介 | 第38-39页 |
| 2.2 红外光谱附件技术简介 | 第39-43页 |
| 2.2.1 衰减全反射技术 | 第39-41页 |
| 2.2.2 偏振技术 | 第41页 |
| 2.2.3 变温技术 | 第41-42页 |
| 2.2.4 透射技术 | 第42页 |
| 2.2.5 时间分辨技术 | 第42-43页 |
| 2.3 二维红外光谱简介 | 第43-44页 |
| 2.4 红外光谱在生物膜/膜蛋白动态研究中的应用 | 第44-46页 |
| 2.4.1 红外光谱在膜动态研究中的应用 | 第44页 |
| 2.4.2 红外光谱在膜蛋白动态研究中的应用 | 第44-46页 |
| 2.5 红外光谱的理论计算方法 | 第46-48页 |
| 第三章 芳香性氨基酸甲醋对POPC膜侧链堆叠作用的ATR-FTIR结合QM计算研究 | 第48-80页 |
| 3.1 引言 | 第48-49页 |
| 3.2 实验部分 | 第49-52页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第49-50页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第50-52页 |
| 3.2.2.1 大多层脂质体(MLVs)的制备 | 第50页 |
| 3.2.2.2 衰减全反射-傅里叶变换红外光谱测定 | 第50-51页 |
| 3.2.2.3 偏振调制的衰减全反射-傅里叶变换红外光谱数据分析 | 第51-52页 |
| 3.3 计算部分 | 第52-53页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第53-76页 |
| 3.4.1 POPC双分子层、POPC双分子层-氨基酸甲酯复合物的ATR-FTIR光谱 | 第53-58页 |
| 3.4.2 POPC、POPC-侧链官能团复合物的红外光谱计算结果 | 第58-61页 |
| 3.4.3 3-己烯、3-己烯-侧链官能团复合物的红外光谱计算结果 | 第61-63页 |
| 3.4.4 POPC、POPC-氨基酸甲酯复合物的电荷计算分析 | 第63-66页 |
| 3.4.5 POPC双分子层、POPC双分子层氨基酸甲酯复合物的二向色性分析 | 第66-68页 |
| 3.4.6 3-己烯、3-己烯-3-己烯复合物的红外光谱计算结果 | 第68-73页 |
| 3.4.7 POPC双分子层中双键距离分布分析 | 第73-76页 |
| 3.5 本章小结 | 第76页 |
| 3.6 支持材料 | 第76-80页 |
| 第四章 含芳香性残基的多肽对POPC-OPG膜侧链堆叠作用的ATR-FTIR结合荧光光谱研究 | 第80-99页 |
| 4.1 引言 | 第80-83页 |
| 4.2 实验部分 | 第83-84页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第83页 |
| 4.2.2 实验方法 | 第83-84页 |
| 4.2.2.1 大多层脂质体(MLVs)的制备 | 第83页 |
| 4.2.2.2 衰减全反射-傅里叶变换红外光谱测定 | 第83-84页 |
| 4.2.2.3 偏振调制的衰减全反射-傅里叶变换红外光谱数据分析 | 第84页 |
| 4.2.2.4 荧光发射光谱 | 第84页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第84-98页 |
| 4.3.1 POPC、POPG和POPC/POPG双分子层的ATR-FTIR光谱 | 第84-87页 |
| 4.3.2 POPC/POPG双分子层、POPC/POPG双分子层-多肽复合物的ATR-FTIR光谱 | 第87-92页 |
| 4.3.3 POPC、POPG、POPC/POPG双分子层、POPC/POPG双分子层-多肽复合物的二向色性分析 | 第92-94页 |
| 4.3.4 POPC双分子-Trp-OMe、POPC/POPG双分子层多肽复合物的荧光发射光谱 | 第94-98页 |
| 4.4 本章小结 | 第98-99页 |
| 第五章 [10,11,14,15-~(13)C_4]-视黄醛重构的WT-BR和Y185F-BR的红外光谱研究 | 第99-128页 |
| 5.1 引言 | 第99-103页 |
| 5.2 实验部分 | 第103-114页 |
| 5.2.1 [10,11,14,15-~(13)C_4]-全反式视黄醛的合成与表征 | 第103-110页 |
| 5.2.1.1 材料与仪器 | 第103页 |
| 5.2.1.2 合成与表征 | 第103-110页 |
| 5.2.2 WT-BR和Y185F-BR蛋白的表达与纯化 | 第110页 |
| 5.2.3 [10,11,14,15-~(13)C_4]-全反式视黄醛的重构 | 第110-112页 |
| 5.2.4 红外光谱测定 | 第112-114页 |
| 5.2.4.1 [10,11,14,15-~(13)C_4]-全反式视黄醛的红外光谱测定 | 第112页 |
| 5.2.4.2 [10,11,14,15-~(13)C_4]-全反式视黄醛重构的WT-BR和Y185F-BR蛋白的透射红外光谱测定 | 第112-113页 |
| 5.2.4.3 [10,11,14,15-~(13)C_4]-全反式视黄醛重构的WT-BR和Y185F-BR蛋白的低温透射红外差谱测定 | 第113-114页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第114-127页 |
| 5.3.1 [10,11,14,15-~(13)C_4]-全反式视黄醛的红外光谱 | 第114-115页 |
| 5.3.2 [10,11,14,15-~(13)C_4]-全反式视黄醛重构的WT-BR和Y185F-BR蛋白的透射红外光谱 | 第115-117页 |
| 5.3.3 WT-BR和[10,11,14,15-~(13)C_4]-全反式视黄醛重构的WT-BR蛋白的K态红外差谱 | 第117-118页 |
| 5.3.4 [10,11,14,15-~(13)C_4]-全反式视黄醛重构的WT-BR和Y185F-BR蛋白的低温透射红外差谱 | 第118-126页 |
| 5.3.4.1 K中间态的构象变化 | 第118-120页 |
| 5.3.4.2 L中间态的构象变化 | 第120-122页 |
| 5.3.4.3 M中间态的构象变化 | 第122-124页 |
| 5.3.4.4 N中间态的构象变化 | 第124-126页 |
| 5.3.5 WT-BR和Y185F-BR蛋白RET-D85-D212-R82区域的BR态和M态对比 | 第126-127页 |
| 5.4 本章小结 | 第127-128页 |
| 第六章 总结与展望 | 第128-131页 |
| 6.1 论文工作总结和创新点 | 第128-130页 |
| 6.1.1 膜动态 | 第128-129页 |
| 6.1.2 膜蛋白动态 | 第129-130页 |
| 6.2 未来工作展望 | 第130-131页 |
| 参考文献 | 第131-148页 |
| 作者简历及在学期间所取得的科研成果 | 第148-151页 |
| 致谢 | 第151-153页 |
