摘要 | 第1-8页 |
Abstract | 第8-15页 |
第一章 文献综述 | 第15-30页 |
·蜱的概述 | 第15页 |
·节肢动物的先天性免疫系统 | 第15-19页 |
·体液免疫 | 第17-18页 |
·细胞免疫 | 第18页 |
·免疫蛋白 | 第18-19页 |
·蜱的先天性免疫研究概况 | 第19-30页 |
·细胞免疫 | 第20-21页 |
·体液免疫 | 第21-23页 |
·先天性免疫相关分子Serpin | 第23-25页 |
·免疫相关分子Subolesin | 第25-28页 |
·蜱的miRNA的研究进展 | 第28-30页 |
第二章 蜱先天性免疫相关分子Serpin的研究 | 第30-46页 |
·前言 | 第30页 |
·材料与方法 | 第30-37页 |
·重组大肠杆菌的诱导表达 | 第30-31页 |
·RHS1和RHS2重组蛋白的酶活性鉴定 | 第31页 |
·部分凝血酶活化时间和凝血酶原时间测定 | 第31-32页 |
·RHS1/RHS2的免疫抑制作用 | 第32页 |
·动物免疫保护和抗蜱疫苗实验 | 第32-33页 |
·RNAi对蜱的生物学特性的影响 | 第33-36页 |
·RHS1/RHS2基因在蜱的生长阶段和器官中的转录水平 | 第36页 |
·病原诱导RHS1/RHS2的表达 | 第36-37页 |
·结果 | 第37-43页 |
·RHS1和RHS2基因的原核表达与蛋白纯化 | 第37页 |
·RHS1和RHS2重组蛋白的酶活性鉴定 | 第37-38页 |
·部分凝血酶活化时间和凝血酶原时间测定 | 第38-39页 |
·rRHS1/rRHS2的免疫抑制作用 | 第39页 |
·动物免疫保护和抗蜱疫苗实验 | 第39-40页 |
·RHS1/RHS2基因的RNA干扰研究 | 第40-41页 |
·RHS1/RHS2基因在蜱的生长阶段和器官中的转录水平 | 第41页 |
·病原诱导RHS1/RHS2的表达 | 第41-43页 |
·讨论 | 第43-45页 |
·小结 | 第45-46页 |
第三章 蜱的先天性免疫相关分子Subolesin的分离鉴定 | 第46-68页 |
·前言 | 第46页 |
·材料与方法 | 第46-60页 |
·试验动物 | 第46页 |
·主要仪器与试剂 | 第46-47页 |
·RHSub 基因的克隆 | 第47-53页 |
·RHSub 的原核表达 | 第53-57页 |
·RHSub 的免疫抑制实验 | 第57页 |
·RNAi 对蜱的生物学特性的影响 | 第57-59页 |
·病原诱导 RHSub 的表达 | 第59页 |
·RHSub 基因在蜱的生长阶段和器官中的转录水平 | 第59-60页 |
·结果 | 第60-65页 |
·RHSub基因的克隆 | 第60-62页 |
·重组蛋白RHSub的表达和纯化 | 第62页 |
·免疫调节实验结果 | 第62-63页 |
·RHSub的RNA干扰研究 | 第63-64页 |
·病原诱导RHSub基因的表达 | 第64-65页 |
·RHSub基因在蜱的生长阶段和器官中的转录水平 | 第65页 |
·讨论 | 第65-67页 |
·小结 | 第67-68页 |
第四章 蜱的先天性免疫相关分子miRNA分离鉴定 | 第68-86页 |
·前言 | 第68页 |
·材料与方法 | 第68-70页 |
·LPS诱导的试剂制备 | 第68页 |
·蜱的准备和分组 | 第68页 |
·总RNA的提取 | 第68页 |
·小RNA鉴定的步骤 | 第68-69页 |
·不同小RNA的分类和miRNA的表达分析 | 第69页 |
·Fold值的计算 | 第69页 |
·小RNA的扩增方法 | 第69-70页 |
·结果 | 第70-84页 |
·样品的检测信息 | 第70页 |
·Agilent2100检测图谱 | 第70-71页 |
·小RNA的长度分布 | 第71-72页 |
·样品间的公共序列和特有序列 | 第72-73页 |
·小RNA的分类注释 | 第73-75页 |
·前10种表达量最多的保守的miRNA | 第75-76页 |
·LPS诱导后miRNA的差异表达 | 第76-84页 |
·讨论 | 第84-85页 |
·小结 | 第85-86页 |
附录1 | 第86-87页 |
附录2 | 第87-88页 |
第五章 全文结论 | 第88-89页 |
参考文献 | 第89-99页 |
致谢 | 第99-100页 |
作者简历 | 第100页 |