| 致谢 | 第1-5页 |
| 中文摘要 | 第5-11页 |
| 英文摘要 | 第11-17页 |
| 目次 | 第17-20页 |
| 引言 | 第20-24页 |
| 2 实验仪器与材料 | 第24-26页 |
| ·临床资料 | 第24页 |
| ·药物 | 第24页 |
| ·主要试剂 | 第24-25页 |
| ·实验动物 | 第25页 |
| ·仪器及设备 | 第25-26页 |
| 3 实验方法 | 第26-30页 |
| ·COX-2与5-LOX在人卵巢癌组织中的表达 | 第26页 |
| ·COX-2与5-LOX免疫组化染色 | 第26页 |
| ·免疫组化染色的结果判定 | 第26页 |
| ·化学诱导大鼠卵巢癌模型与药物干预COX-2/5-LOX生物学效应 | 第26-28页 |
| ·致癌剂棉线的制备 | 第26页 |
| ·造模方法 | 第26-27页 |
| ·实验动物分组及给药方案 | 第27页 |
| ·实验动物观察与取材 | 第27页 |
| ·ELISA测定大鼠血清PGE_2、LTB_4含量 | 第27页 |
| ·卵巢肿瘤组织的病理学检查 | 第27页 |
| ·免疫组织化学检测大鼠卵巢肿瘤组织COX-2、5-LOX、VEGF、CD68蛋白表达 | 第27-28页 |
| ·Western-blot分析大鼠卵巢肿瘤组织COX-2、5-LOX、VEGF蛋白表达 | 第28页 |
| ·青蒿鳖甲方红外光谱分析 | 第28页 |
| ·供试样品制备 | 第28页 |
| ·样品红外光谱分析 | 第28页 |
| ·数据统计分析 | 第28-30页 |
| 4 实验结果 | 第30-45页 |
| ·分析COX-2、5-LOX表达强度与卵巢癌临床病理参数间的关系 | 第30-32页 |
| ·COX-2和5-LOX在不同卵巢组织中的表达 | 第30-31页 |
| ·COX-2、5-LOX表达与卵巢癌临床病理参数之间的关系 | 第31-32页 |
| ·化学诱导性大鼠卵巢癌COX-2/5-LOX生物学效应的药物干预 | 第32-42页 |
| ·大鼠一般情况 | 第32-33页 |
| ·降低大鼠卵巢恶性肿瘤诱发率 | 第33-35页 |
| ·大鼠卵巢肿瘤组织病理学表现 | 第35-37页 |
| ·抑制大鼠体内炎性介质PGE_2、LTB_4产生 | 第37-38页 |
| ·降低大鼠卵巢肿瘤组织中巨噬细胞浸润 | 第38-39页 |
| ·下调大鼠卵巢肿瘤组织COX-2、5-LOX、VEGF蛋白表达 | 第39-42页 |
| ·青蒿鳖甲方红外光谱分析 | 第42-45页 |
| 5 讨论 | 第45-53页 |
| ·AA代谢关键酶COX-2与5-LOX在人卵巢癌中的表达及对临床意义 | 第45-46页 |
| ·青蒿鳖甲汤与COX-2/5-LOX通路抑制剂对二甲基苯蒽(DMBA)诱发大鼠卵巢癌的干预作用比较 | 第46-51页 |
| ·卵巢癌动物模型的建立 | 第46-47页 |
| ·青蒿鳖甲汤与COX-2/5-LOX通路抑制剂降低DMBA卵巢癌诱发率及对卵巢肿瘤组织形态学的干预 | 第47-49页 |
| ·青蒿鳖甲汤与COX-2/5-LOX抑制剂对癌变过程巨噬细胞浸润及花生四烯酸生物学效应干预 | 第49-51页 |
| ·青蒿鳖甲方红外光谱分析 | 第51-53页 |
| 总结 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-59页 |
| 综述 | 第59-69页 |
| 参考文献 | 第65-69页 |
| 作者简历及在学期间发表的论文 | 第69页 |
