独创性声明 | 第1页 |
关于论文使用授权的说明 | 第2-9页 |
中文摘要 | 第9-12页 |
ABSTRACT | 第12-15页 |
缩略词 | 第15-16页 |
第一章 文献综述及前言 | 第16-39页 |
1.植物的性与性别决定系统研究进展 | 第16-20页 |
·植物的性别类型 | 第16-17页 |
·植物的性别决定系统 | 第17-20页 |
·由性别决定基因控制的植物性别决定系统 | 第17-18页 |
·由性染色体控制的植物性别决定系统 | 第18页 |
·由X染色体/常染色体组比例控制的植物性别决定系统 | 第18-20页 |
2.黄瓜的性与性别决定研究进展 | 第20-32页 |
·黄瓜性别决定基因及其功能 | 第20-22页 |
·F/f(又名St,Acr)基因 | 第20页 |
·A/a基因 | 第20页 |
·M/m基因 | 第20-21页 |
·In-F基因(以前命名为F) | 第21页 |
·Tr基因 | 第21页 |
·gy基因 | 第21页 |
·m-2基因(又名h基因) | 第21-22页 |
·黄瓜性别决定假说 | 第22-24页 |
·F、M位点互作分子模型 | 第22-23页 |
·单一激素控制黄瓜花型表现假说 | 第23-24页 |
·黄瓜性别决定的分子生物学基础研究 | 第24-32页 |
·黄瓜性别决定有关的同源异型基因 | 第24-26页 |
·黄瓜性别决定基因M、Gy位点相关的基因克隆 | 第26页 |
·乙烯影响黄瓜性别的分子生物学研究进展 | 第26-32页 |
·乙烯的生物合成与黄瓜性别分化 | 第27-28页 |
·ACC合酶 | 第27页 |
·ACC氧化酶 | 第27-28页 |
·乙烯的信号转导与黄瓜性别分化 | 第28-32页 |
·乙烯受体基因克隆 | 第29-30页 |
·乙烯信号转导基因EIN3基因 | 第30-32页 |
3 前言 | 第32-35页 |
·黄瓜性别决定研究的目的、意义 | 第32-34页 |
·本研究的技术路线 | 第34-35页 |
参考文献 | 第35-39页 |
第二章 黄瓜性别决定基因遗传规律的研究 | 第39-52页 |
1 材料与方法 | 第39-41页 |
·材料 | 第39-40页 |
·方法 | 第40-41页 |
2 结果与分析 | 第41-50页 |
·黄瓜两性花基因的遗传规律 | 第41-43页 |
·黄瓜雌性基因的遗传规律 | 第43-44页 |
·黄瓜强雌性基因的遗传规律 | 第44-50页 |
·雌雄同株黄瓜品种的分类 | 第44页 |
·隐性强雌性基因的遗传分析 | 第44-48页 |
·显性强雌性基因的遗传分析 | 第48-50页 |
3 讨论 | 第50-51页 |
·关于两性花和雌性系性别表达分析 | 第50页 |
·关于黄瓜强雌性基因性别表达分析 | 第50页 |
·关于强雌性基因与显性雌性F基因的关系 | 第50页 |
·关于显性和隐性强雌系基因相互关系 | 第50页 |
·关于黄瓜性别表达修饰基因与强雌性基因的关系 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-52页 |
第三章 不同药剂处理对强雌性基因型黄瓜性别表达的影响 | 第52-59页 |
1.材料和方法 | 第53-54页 |
·材料 | 第53页 |
·方法 | 第53-54页 |
·试验处理方法 | 第53页 |
·记录方法 | 第53页 |
·分析方法 | 第53-54页 |
2.结果及分析 | 第54-55页 |
·不同药剂处理对强雌性黄瓜植株雌花的影响 | 第54页 |
·不同药剂处理对强雌性黄瓜植株雄花的影响 | 第54-55页 |
·不同药剂处理对强雌性黄瓜雄花数与雌花数比值的影响 | 第55页 |
3.讨论 | 第55-56页 |
参考文献 | 第56-59页 |
第四章 黄瓜EIN3基因的SNP、RFLP-BfmⅠ分析及与性别表达的关系 | 第59-76页 |
1 材料与方法 | 第59-67页 |
1.实验材料 | 第59-60页 |
·材料的培养与黄瓜性别的鉴定 | 第60页 |
·基因组DNA提取 | 第60-61页 |
·引物设计 | 第61页 |
·PCR扩增条件 | 第61-62页 |
·PCR反应体系 | 第61-62页 |
·PCR反应程序 | 第62页 |
·PCR产物的克隆测序 | 第62-66页 |
·PCR产物的纯化回收 | 第62-63页 |
·PCR产物与载体的连接 | 第63-64页 |
·感受态细胞的制备 | 第64-65页 |
·感受态细胞的转化 | 第65页 |
·重组质粒的提取 | 第65-66页 |
·重组质粒的筛选与鉴定 | 第66页 |
·阳性克隆测序 | 第66页 |
·核苷酸序列SNP分析 | 第66页 |
·酶切条件 | 第66页 |
·PCR及酶切产物的检测 | 第66-67页 |
2 结果及分析 | 第67-74页 |
·基因组DNA的提取结果 | 第67-68页 |
·PCR产物的电泳结果 | 第68页 |
·重组质粒的转化、筛选与鉴定 | 第68-69页 |
·核苷酸序列 | 第69-71页 |
·氨基酸序列分析 | 第71-73页 |
·酶切产物的电泳结果 | 第73-74页 |
3.讨论 | 第74页 |
4 小结 | 第74-75页 |
参考文献 | 第75-76页 |
第五章 黄瓜雌性性状主控基因CsACS1G基因的分析及其定位 | 第76-85页 |
1 材料和方法 | 第76-80页 |
·实验材料 | 第76-77页 |
·黄瓜性别的鉴定 | 第77页 |
·基因组DNA的提取 | 第77-78页 |
·CsACS1G基因SCAR引物设计 | 第78页 |
·PCR扩增及电泳分析 | 第78-79页 |
·群体的SCAR标记的检测和数据收集 | 第79页 |
·标记的图谱定位 | 第79-80页 |
2 结果与分析 | 第80-82页 |
·CsACS1G在不同性型植株间的检测结果 | 第80-82页 |
·CsACS1G-SCAR引物的扩增结果 | 第80页 |
·CsACS1-SCAR引物扩增结果引物 | 第80-81页 |
·CsACS1G-SCAR引物在重组自交系群体中的扩增结果 | 第81-82页 |
·CsACS1G的定位 | 第82页 |
3 讨论 | 第82-84页 |
参考文献 | 第84-85页 |
第六章 与黄瓜性别决定基因相关的分子标记的研究 | 第85-100页 |
1 材料与方法 | 第86-91页 |
·材料 | 第86-87页 |
·黄瓜性别的鉴定 | 第87页 |
·基因组DNA的提取 | 第87页 |
·与黄瓜性别表达有关的引物设计 | 第87-88页 |
·ACS-PCR及其在F_2群体上的分析 | 第88-89页 |
·ACS引物PCR反应体系 | 第88-89页 |
·ACS引物PCR反应程序 | 第89页 |
·F_2群体ACS引物标记的分离检测 | 第89页 |
·CsACS1G-SCAR PCR及其在F_2群体上的分析 | 第89页 |
·CsACS1G-SCAR引物PCR反应体系 | 第89页 |
·CsACS1G-SCAR引物PCR反应程序 | 第89页 |
·F_2群体CsACS1G-SCAR引物标记的分离检测 | 第89页 |
·RAPD-PCR及其在F_2群体上的分析 | 第89-91页 |
·RAPD反应体系 | 第89-90页 |
·RAPD反应程序 | 第90页 |
·电泳及其检测 | 第90-91页 |
·F_2群体RAPD标记的分离检测 | 第91页 |
·PCR产物的克隆测序 | 第91页 |
·F_2群体ACS、SCAR和RAPD标记的检测和数据收集、编码 | 第91页 |
·连锁分析及作图 | 第91页 |
2 结果与分析 | 第91-97页 |
·与黄瓜性别表达相关的分子标记筛选及F_2代的分离 | 第92-94页 |
·ACS引物对1的扩增结果 | 第92页 |
·CsACS1G-SCAR引物对1的扩增结果 | 第92-93页 |
·RAPD引物S12的扩增结果 | 第93-94页 |
·ACS引物对1、CsACS1G-SCAR引物对1及RAPD引物S12在A×H F_2代群体中的分离 | 第94-96页 |
·F基因的定位 | 第96-97页 |
·Mod-F1,mod-F2不是F基因的等位基因分子水平验证 | 第97页 |
3 讨论 | 第97-98页 |
参考文献 | 第98-100页 |
第七章 强雌性基因材料的应用—Xy2品种的选育 | 第100-106页 |
1 选育过程 | 第101页 |
2 选育结果 | 第101-104页 |
·丰产性 | 第101-103页 |
·品种比较试验 | 第102页 |
·区域试验 | 第102-103页 |
·抗病性 | 第103-104页 |
3 品种特征特性 | 第104页 |
4 生产示范 | 第104页 |
5 栽培技术要点 | 第104-105页 |
参考文献 | 第105-106页 |
第八章 结论、创新点及进一步研究计划 | 第106-108页 |
1 结论 | 第106-107页 |
2 创新点 | 第107页 |
3 进一步研究计划 | 第107-108页 |
致谢 | 第108-109页 |
作者简介 | 第109-110页 |
攻读博士学位期间取得的学术成果 | 第110页 |