摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-10页 |
引言 | 第10-11页 |
1 文献综述 | 第11-38页 |
1.1 酶联免疫吸附法(ELISA) | 第11-18页 |
1.1.1 ELISA的测定基本原理 | 第11-12页 |
1.1.2 方法类型和操作步骤: | 第12-15页 |
1.1.3 酶联免疫吸附法(ELISA)在食品安全快速检测中的应用 | 第15-17页 |
1.1.4 酶联免疫吸附法(ELISA)试剂盒的举例 | 第17-18页 |
1.2 酶联免疫吸附法(ELISA)分析的关键环节 | 第18-23页 |
1.2.1 人工抗原合成常用的载体 | 第18-19页 |
1.2.2 人工抗原合成方法 | 第19-21页 |
1.2.3 影响人工抗原质量的因素 | 第21-22页 |
1.2.4 人工抗原的质量评定 | 第22-23页 |
1.3 抗原纯化方法 | 第23-28页 |
1.3.1 根据分子大小不同的纯化方法 | 第23-25页 |
1.3.2 利用溶解度差别的纯化方法 | 第25-26页 |
1.3.3 根据电荷不同的纯化方法 | 第26-27页 |
1.3.4 利用选择性吸附的纯化方法 | 第27页 |
1.3.5 利用对配体的特异生物学亲和力的纯化方法 | 第27-28页 |
1.4 卵黄抗体的研究进展 | 第28-34页 |
1.4.1 卵黄抗体的性质 | 第28-29页 |
1.4.2 鸡的免疫程序 | 第29页 |
1.4.3 卵黄免疫球蛋白(IgY)的提取纯化 | 第29-34页 |
1.6 本论文的研究内容和研究意义 | 第34-35页 |
参考文献 | 第35-38页 |
2 氯霉素全抗原的合成与鉴定 | 第38-58页 |
2.1 氯霉素抗原合成 | 第38-42页 |
2.1.1 概述 | 第38-39页 |
2.1.2 实验材料与仪器 | 第39页 |
2.1.3 羰基二咪唑法合成免疫抗原和包被抗原 | 第39-41页 |
2.1.4 戊二醛法合成免疫抗原和包被抗原 | 第41-42页 |
2.2 氯霉素抗原的纯化 | 第42-43页 |
2.2.1 概述 | 第42页 |
2.2.2 实验材料与仪器 | 第42页 |
2.2.3 实验方法: | 第42-43页 |
2.3 氯霉素抗原的鉴定 | 第43-46页 |
2.3.1 概述 | 第43页 |
2.3.2 实验材料与仪器 | 第43-44页 |
2.3.3 实验方法 | 第44-46页 |
2.4 结果与讨论 | 第46-56页 |
2.4.1 氯霉素合成抗原的纯化 | 第46-49页 |
2.4.2 全抗原CAP-BSA的紫外光谱 | 第49-50页 |
2.4.3 全抗原CAP-BSA的红外光谱 | 第50-51页 |
2.4.4 电泳 | 第51页 |
2.4.5 ELISA试剂盒和TNBS法的检测结果 | 第51-53页 |
2.4.6 抗原合成条件的初步摸索 | 第53-56页 |
2.5 小结 | 第56页 |
参考文献 | 第56-58页 |
3 卵黄免疫球蛋白(IgY)的获得与纯化 | 第58-71页 |
3.1 引言 | 第58页 |
3.2 实验材料与仪器 | 第58-59页 |
3.2.1 实验材料 | 第58页 |
3.2.2 仪器 | 第58页 |
3.2.3 实验动物 | 第58-59页 |
3.3 实验方法 | 第59-65页 |
3.3.1 母鸡免疫 | 第59页 |
3.3.2 IgY的初级分离纯化 | 第59-61页 |
3.3.3 特异性IgY的免疫亲和纯化 | 第61-64页 |
3.3.4 氯霉素卵黄抗体的活性检测——间接法酶联免疫吸附分析法(ELISA)测定抗体效价 | 第64-65页 |
3.4 结果与讨论 | 第65-70页 |
3.4.1 抗氯霉素卵黄抗体初步提取方法的比较 | 第65-66页 |
3.4.2 氯霉素亲和柱的制备 | 第66-67页 |
3.4.3 间接ELISA最适工作浓度的确定 | 第67页 |
3.4.4 特异性IgY的免疫亲和纯化 | 第67-68页 |
3.4.5 免疫滴定曲线 | 第68-70页 |
3.5 小结 | 第70页 |
参考文献 | 第70-71页 |
4 结论 | 第71-73页 |
4.1 结论 | 第71页 |
4.2 特色与创新 | 第71-72页 |
4.3 展望 | 第72-73页 |
攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第73-74页 |
致谢 | 第74-75页 |
大连理工大学学位论文版权使用授权书 | 第75页 |