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氯霉素全抗原的合成及其卵黄抗体的分离纯化

摘要第1-5页
Abstract第5-10页
引言第10-11页
1 文献综述第11-38页
 1.1 酶联免疫吸附法(ELISA)第11-18页
  1.1.1 ELISA的测定基本原理第11-12页
  1.1.2 方法类型和操作步骤:第12-15页
  1.1.3 酶联免疫吸附法(ELISA)在食品安全快速检测中的应用第15-17页
  1.1.4 酶联免疫吸附法(ELISA)试剂盒的举例第17-18页
 1.2 酶联免疫吸附法(ELISA)分析的关键环节第18-23页
  1.2.1 人工抗原合成常用的载体第18-19页
  1.2.2 人工抗原合成方法第19-21页
  1.2.3 影响人工抗原质量的因素第21-22页
  1.2.4 人工抗原的质量评定第22-23页
 1.3 抗原纯化方法第23-28页
  1.3.1 根据分子大小不同的纯化方法第23-25页
  1.3.2 利用溶解度差别的纯化方法第25-26页
  1.3.3 根据电荷不同的纯化方法第26-27页
  1.3.4 利用选择性吸附的纯化方法第27页
  1.3.5 利用对配体的特异生物学亲和力的纯化方法第27-28页
 1.4 卵黄抗体的研究进展第28-34页
  1.4.1 卵黄抗体的性质第28-29页
  1.4.2 鸡的免疫程序第29页
  1.4.3 卵黄免疫球蛋白(IgY)的提取纯化第29-34页
 1.6 本论文的研究内容和研究意义第34-35页
 参考文献第35-38页
2 氯霉素全抗原的合成与鉴定第38-58页
 2.1 氯霉素抗原合成第38-42页
  2.1.1 概述第38-39页
  2.1.2 实验材料与仪器第39页
  2.1.3 羰基二咪唑法合成免疫抗原和包被抗原第39-41页
  2.1.4 戊二醛法合成免疫抗原和包被抗原第41-42页
 2.2 氯霉素抗原的纯化第42-43页
  2.2.1 概述第42页
  2.2.2 实验材料与仪器第42页
  2.2.3 实验方法:第42-43页
 2.3 氯霉素抗原的鉴定第43-46页
  2.3.1 概述第43页
  2.3.2 实验材料与仪器第43-44页
  2.3.3 实验方法第44-46页
 2.4 结果与讨论第46-56页
  2.4.1 氯霉素合成抗原的纯化第46-49页
  2.4.2 全抗原CAP-BSA的紫外光谱第49-50页
  2.4.3 全抗原CAP-BSA的红外光谱第50-51页
  2.4.4 电泳第51页
  2.4.5 ELISA试剂盒和TNBS法的检测结果第51-53页
  2.4.6 抗原合成条件的初步摸索第53-56页
 2.5 小结第56页
 参考文献第56-58页
3 卵黄免疫球蛋白(IgY)的获得与纯化第58-71页
 3.1 引言第58页
 3.2 实验材料与仪器第58-59页
  3.2.1 实验材料第58页
  3.2.2 仪器第58页
  3.2.3 实验动物第58-59页
 3.3 实验方法第59-65页
  3.3.1 母鸡免疫第59页
  3.3.2 IgY的初级分离纯化第59-61页
  3.3.3 特异性IgY的免疫亲和纯化第61-64页
  3.3.4 氯霉素卵黄抗体的活性检测——间接法酶联免疫吸附分析法(ELISA)测定抗体效价第64-65页
 3.4 结果与讨论第65-70页
  3.4.1 抗氯霉素卵黄抗体初步提取方法的比较第65-66页
  3.4.2 氯霉素亲和柱的制备第66-67页
  3.4.3 间接ELISA最适工作浓度的确定第67页
  3.4.4 特异性IgY的免疫亲和纯化第67-68页
  3.4.5 免疫滴定曲线第68-70页
 3.5 小结第70页
 参考文献第70-71页
4 结论第71-73页
 4.1 结论第71页
 4.2 特色与创新第71-72页
 4.3 展望第72-73页
攻读硕士学位期间发表学术论文情况第73-74页
致谢第74-75页
大连理工大学学位论文版权使用授权书第75页

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