| 摘要 | 第1-14页 |
| Abstract | 第14-19页 |
| 第一章 绪论 | 第19-45页 |
| ·微生物来源的生物聚合物—细胞外多糖 | 第19-21页 |
| ·微生物胞外多糖 | 第19-21页 |
| ·食品级微生物胞外多糖 | 第21页 |
| ·乳酸菌产胞外多糖的分类、化学组成和结构 | 第21-27页 |
| ·乳酸菌产EPS的分类 | 第21-24页 |
| ·乳酸菌EPS的化学组成 | 第24-26页 |
| ·乳酸菌EPS的结构 | 第26-27页 |
| ·乳酸菌EPS的生物合成和基因学研究 | 第27-38页 |
| ·乳酸菌EPS的生物合成 | 第27-33页 |
| ·糖转运进入细胞质 | 第27-28页 |
| ·糖-1-磷酸的合成 | 第28-30页 |
| ·糖核苷酸的合成及聚合成EPS重复单元 | 第30-32页 |
| ·EPS的聚合和释放 | 第32-33页 |
| ·影响多糖生物合成的主要因素 | 第33-35页 |
| ·乳酸菌胞外多糖生物合成的基因学 | 第35-38页 |
| ·胞外多糖基因组的性质 | 第35-36页 |
| ·胞外多糖生物合成的基因组成 | 第36-38页 |
| ·乳酸菌产胞外多糖的微生物生理学和工艺学研究 | 第38-43页 |
| ·研究乳酸菌EPS的方法学 | 第38页 |
| ·乳酸菌EPS的产量 | 第38-39页 |
| ·提高乳酸菌生长和EPS产量的营养物质 | 第39-40页 |
| ·碳源和氮源对多糖分子量和组成的影响 | 第40-41页 |
| ·乳酸菌产胞外多糖的条件优化 | 第41-42页 |
| ·乳酸菌EPS产量的动力学研究 | 第42-43页 |
| ·乳酸菌胞外多糖的应用研究 | 第43-45页 |
| 第二章 产胞外多糖乳酸菌的筛选和菌种鉴定 | 第45-62页 |
| ·材料与方法 | 第46-52页 |
| ·培养基 | 第46-47页 |
| ·试剂 | 第47-48页 |
| ·仪器设备 | 第48页 |
| ·菌种的分离纯化 | 第48-49页 |
| ·产胞外多糖乳酸菌的初筛 | 第49页 |
| ·产胞外多糖菌种的鉴定 | 第49页 |
| ·EPS-Ⅰ的薄层色谱(TLC)分析 | 第49-50页 |
| ·Z_(222)菌总DNA的提取 | 第50页 |
| ·PCR反应 | 第50-51页 |
| ·琼脂糖电泳分析 | 第51页 |
| ·DNA序列的测定 | 第51页 |
| ·菌株Z_(222)的急性毒性试验 | 第51-52页 |
| ·结果 | 第52-60页 |
| ·乳酸菌Z_(222)的菌种鉴定 | 第52-54页 |
| ·Enterococcus durans Z_(222)发酵液中EPS的薄层层析结果 | 第54-55页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳分析PCR结果 | 第55-56页 |
| ·Z_(222)菌株的16Sr DNA的序列分析 | 第56页 |
| ·菌株Z_(222)产多糖对照试验结果 | 第56-59页 |
| ·急性毒性试验结果 | 第59-60页 |
| ·讨论 | 第60-62页 |
| 第三章 Enterococcus durans Z_(222)菌株产胞外多糖的条件优化 | 第62-75页 |
| ·材料和方法 | 第62-66页 |
| ·菌株 | 第62页 |
| ·培养基 | 第62-63页 |
| ·试剂和仪器 | 第63页 |
| ·DNS法糖标准曲线的制作 | 第63-64页 |
| ·Enterococcus durans Z_(222)菌株的发酵液中还原糖的测定 | 第64页 |
| ·苯酚--硫酸(Phenol-H_2SO_4)法糖标准曲线的制作 | 第64页 |
| ·Enterococcus durans Z_(222)菌株发酵液中总糖和多糖的测定 | 第64-65页 |
| ·Enterococcus durans Z_(222)菌株产多糖的对照试验 | 第65页 |
| ·培养温度对Enterococcus durans Z_(222)菌株产EPS的影响 | 第65页 |
| ·培养基中不同种类的糖和不同浓度初始糖量对EPS产量的影响 | 第65-66页 |
| ·Enterococcus durans Z_(222)菌株发酵液中EPS产量随时间的变化 | 第66页 |
| ·结果 | 第66-73页 |
| ·DNS法糖标准曲线 | 第66-67页 |
| ·Phenol-H_2SO_4法标准曲线 | 第67页 |
| ·Enterococcus durans Z_(222)菌株产多糖的对照试验结果 | 第67-68页 |
| ·发酵温度对菌株Z_(222)产EPS的影响 | 第68-71页 |
| ·培养基中不同种类的糖对EPS产量的影响试验 | 第71页 |
| ·培养基中葡萄糖起始含量不同对产EPS的影响试验 | 第71-72页 |
| ·时间对EPS产生的影响 | 第72-73页 |
| ·讨论 | 第73-75页 |
| 第四章 胞外多糖EPS-Ⅰ的分离纯化和分析 | 第75-84页 |
| ·材料和方法 | 第75-78页 |
| ·菌株 | 第76页 |
| ·培养基 | 第76页 |
| ·试剂和仪器 | 第76页 |
| ·Enterococcus durans Z_(222)产胞外多糖的提取 | 第76页 |
| ·EPS-Ⅰ的纯化步骤 | 第76-77页 |
| ·高效液相色谱(HPLC)分析 | 第77页 |
| ·EPS-Ⅰ的元素分析 | 第77页 |
| ·EPS-Ⅰ的比旋光度测定 | 第77-78页 |
| ·EPS-Ⅰ的分子量测定 | 第78页 |
| ·结果与讨论 | 第78-82页 |
| ·CM-纤维素柱层析分离结果 | 第78页 |
| ·DEAE-Sephadex A-25柱层析分离结果 | 第78-79页 |
| ·Sephadex G-100柱层析分离结果 | 第79-80页 |
| ·HPLC分析结果 | 第80-81页 |
| ·EPS-Ⅰ的元素分析结果 | 第81页 |
| ·EPS-Ⅰ的旋光度 | 第81-82页 |
| ·EPS-Ⅰ的分子量 | 第82页 |
| ·讨论 | 第82-84页 |
| 第五章 Enterococcus durans Z_(222)产胞外多糖EPS-Ⅰ的结构解析 | 第84-106页 |
| ·材料和方法 | 第85-88页 |
| ·样品 | 第85页 |
| ·试剂 | 第85页 |
| ·主要仪器 | 第85页 |
| ·EPS-Ⅰ的红外光谱的测定 | 第85页 |
| ·EPS-Ⅰ的~1H-NMR和~(13)C-NMR光谱的测定 | 第85-86页 |
| ·糖组成分析 | 第86页 |
| ·甲基亚磺酰甲基钠(SMSM)的制备 | 第86页 |
| ·甲基化分析 | 第86-87页 |
| ·全甲基化EPS-Ⅰ水解和乙酰化反应 | 第87页 |
| ·核磁共振谱分析 | 第87-88页 |
| ·结果 | 第88-105页 |
| ·EPS-Ⅰ的红外光谱特征分析 | 第88页 |
| ·EPS-Ⅰ的核磁共振氢谱和碳谱 | 第88-90页 |
| ·EPS-Ⅰ甲基化的检测结果 | 第90-91页 |
| ·EPS-Ⅰ的糖组成分析结果 | 第91-92页 |
| ·EPS-Ⅰ的部分甲基化糖醇乙酸酯的气质联用(GC-MS)分析结果 | 第92-96页 |
| ·EPS-Ⅰ的结构解析 | 第96-105页 |
| ·讨论 | 第105-106页 |
| 第六章 Enterococcus durans Z_(222)产EPS-Ⅰ的免疫学活性研究 | 第106-119页 |
| ·材料和方法 | 第107-111页 |
| ·样品 | 第107页 |
| ·动物 | 第107-108页 |
| ·试剂 | 第108-109页 |
| ·对绵羊红细胞(SRBC)诱导的小鼠足垫迟发型超敏反应和对荷瘤小鼠免疫器官的重量的影响试验 | 第109页 |
| ·对小鼠脾细胞抗体形成的影响试验 | 第109页 |
| ·脾细胞悬液的制备 | 第109-110页 |
| ·巨噬细胞的获取和培养 | 第110页 |
| ·淋巴细胞转化测定 | 第110页 |
| ·巨噬细胞吞噬能力测定 | 第110-111页 |
| ·NK细胞活性测定 | 第111页 |
| ·IL-2的诱导及活性测定 | 第111页 |
| ·结果 | 第111-116页 |
| ·迟发型超敏反应(DTH) | 第112页 |
| ·对荷瘤小鼠免疫器官重量的影响试验 | 第112-113页 |
| ·对荷瘤小鼠脾细胞抗体形成的影响试验 | 第113页 |
| ·淋巴细胞转化测定 | 第113-114页 |
| ·巨噬细胞吞噬能力测定 | 第114-115页 |
| ·EPS-Ⅰ对体外NK细胞活性的影响 | 第115-116页 |
| ·EPS-Ⅰ对IL-2的诱导作用 | 第116页 |
| ·讨论 | 第116-119页 |
| 参考文献 | 第119-132页 |
| 致谢 | 第132-133页 |
| 发表文章 | 第133-134页 |
| 附：论文中部分插图的原始图谱 | 第134-156页 |
