| 中文摘要 | 第1-7页 |
| 英文摘要 | 第7-11页 |
| 1 绪论 | 第11-21页 |
| ·岩原鲤简介 | 第11页 |
| ·鱼类肠道小肽转运载体 PepT1 的研究进展 | 第11-20页 |
| ·鱼类PepT1 生理特性 | 第13-15页 |
| ·鱼类PepT1 cDNA 序列和蛋白质分子结构 | 第15-16页 |
| ·鱼类PepT1 mRNA 组织分布与发育阶段的表达 | 第16-17页 |
| ·饥饿与日粮对鱼类和其他高等脊椎动物PepT1 mRNA 表达的影响 | 第17-20页 |
| ·本项研究的目的、意义 | 第20-21页 |
| 2 岩原鲤小肽转运载体 PepT1 基因片段克隆及序列分析 | 第21-36页 |
| ·材料与方法 | 第21-27页 |
| ·实验动物 | 第21页 |
| ·宿主菌 | 第21页 |
| ·试剂和试剂盒 | 第21-22页 |
| ·仪器和设备 | 第22页 |
| ·溶液配制 | 第22-23页 |
| ·引物设计 | 第23页 |
| ·总RNA 提取和cDNA 合成 | 第23-25页 |
| ·目的基因片段克隆与测序 | 第25-27页 |
| ·结果 | 第27-34页 |
| ·RNA 提取 | 第27-28页 |
| ·岩原鲤肠道cDNA 特异性序列的扩增 | 第28-29页 |
| ·PepT1 基因片段的测序结果及特异性检测 | 第29-34页 |
| ·讨论 | 第34-36页 |
| 3 岩原鲤 PepT1 基因的组织分布 | 第36-51页 |
| ·材料与方法 | 第36-43页 |
| ·实验动物 | 第36页 |
| ·试剂和试剂盒 | 第36-37页 |
| ·仪器和设备 | 第37页 |
| ·荧光定量引物设计 | 第37-38页 |
| ·总RNA 的提取和cDNA 的合成 | 第38-40页 |
| ·荧光定量PCR | 第40-43页 |
| ·数据处理 | 第43页 |
| ·结果 | 第43-49页 |
| ·DNaseⅠ处理的RNA 质量 | 第43页 |
| ·荧光定量PCR 标准曲线 | 第43-48页 |
| ·PepT1 基因在各组织中的表达 | 第48-49页 |
| ·讨论 | 第49-51页 |
| 4 饥饿及外源蛋白对岩原鲤 PepT1 基因表达的影响 | 第51-62页 |
| ·材料与方法 | 第52-54页 |
| ·实验动物 | 第52页 |
| ·试剂和试剂盒 | 第52-53页 |
| ·仪器和设备 | 第53页 |
| ·蛋白溶液的配制 | 第53页 |
| ·麻醉剂及麻醉剂量选择 | 第53页 |
| ·麻醉灌喂 | 第53-54页 |
| ·总RNA 的提取和cDNA 的合成 | 第54页 |
| ·前肠PepT1 基因表达的荧光定量PCR | 第54页 |
| ·数据处理 | 第54页 |
| ·结果 | 第54-58页 |
| ·DNaseⅠ处理的RNA 质量 | 第54-55页 |
| ·最佳麻醉剂量 | 第55页 |
| ·饥饿对岩原鲤前肠 PepT1 表达的影响 | 第55-56页 |
| ·灌喂大豆低聚肽后前肠 PepT1 的基因表达 | 第56-58页 |
| ·讨论 | 第58-62页 |
| 5 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-68页 |
| 附录 A：攻读硕士学位期间发表论文 | 第68-69页 |
| 附录 B：大豆低聚肽总氨基酸含量检测报告 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
