| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 符号及缩略语表 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-23页 |
| 第一节 植物抗病反应研究进展 | 第11-19页 |
| 1 植物的抗病性 | 第11-12页 |
| 2 植物抗病基因 | 第12-15页 |
| ·抗病相关基因分类 | 第12-13页 |
| ·R基因产物的结构特点及R-AVR识别机制 | 第13-15页 |
| 3 植物抗病反应中的信号分子 | 第15-19页 |
| ·ROS | 第15-17页 |
| ·NO | 第17-18页 |
| ·SA、JA和ET | 第18页 |
| ·ABA | 第18-19页 |
| 第二节 磷脂酶与植物抗病反应 | 第19-23页 |
| 1 磷脂酶D与植物抗病反应 | 第19-21页 |
| 2 磷脂酶C与植物抗病反应 | 第21-23页 |
| 第二章 Xylanase能够激活水稻悬浮培养细胞PLD活性并且PLD参与调控活性氧爆发 | 第23-37页 |
| 1 引言 | 第23页 |
| 2 材料与方法 | 第23-28页 |
| ·实验材料 | 第23-24页 |
| ·实验试剂 | 第24页 |
| ·水稻悬浮细胞的诱导和培养 | 第24页 |
| ·PLDa的活性测定 | 第24-25页 |
| ·PLDβ的活性测定 | 第25-26页 |
| ·RT-PCR | 第26-27页 |
| ·O_2的含量测定 | 第27-28页 |
| ·H_2O_2的含量测定 | 第28页 |
| 3 实验结果与分析 | 第28-34页 |
| ·Xylanase处理水稻悬浮培养细胞时,激活了PLDα和PLDp的活性 | 第28-29页 |
| ·Xylanase处理水稻悬浮培养细胞时,基因OsPLDa1、OsPLDβ1和OsPI-PLC1表达情况 | 第29-31页 |
| ·Xylanase处理水稻悬浮培养细胞时,细胞中活性氧(O_2和H_2O_2)变化情况 | 第31-32页 |
| ·外源PA处理水稻悬浮培养细胞时,细胞中活性氧(O_2和H_2O_2)变化情况 | 第32-33页 |
| ·1-Butanol和Neomycin Sulfate能够抑制Xylanase诱导的活性氧爆发 | 第33-34页 |
| 4 讨论 | 第34-37页 |
| 第三章 PLC和PLD参与Xylanase诱导的水稻悬浮培养细胞的抗病反应 | 第37-45页 |
| 1 引言 | 第37-38页 |
| 2 材料与方法 | 第38-40页 |
| ·实验材料 | 第38页 |
| ·实验试剂 | 第38页 |
| ·水稻悬浮细胞的培养 | 第38页 |
| ·RT-PCR | 第38页 |
| ·细胞死亡的测定 | 第38-39页 |
| ·细胞凋亡 | 第39页 |
| ·植物抗毒素的含量分析 | 第39-40页 |
| 3 实验结果与分析 | 第40-43页 |
| ·PLC和PLD参与调节抗病基因PR10α和OsChit-1的表达 | 第40-41页 |
| ·PLC和PLD参与调节 Xylanase诱导的细胞死亡 | 第41-42页 |
| ·PLC和PLD参与调节Xylanase诱导的细胞凋亡 | 第42页 |
| ·PLC和PLD参与调节Xylanase诱导的水稻植物抗毒素(植保素)的合成 | 第42-43页 |
| 4 讨论 | 第43-45页 |
| 全文总结 | 第45-47页 |
| 创新之处 | 第47-49页 |
| 不足之处 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-59页 |
| 附录1: MS培养基(MS culture medium) | 第59-60页 |
| 附录2: H_2O_2—KI标准曲线 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
