致谢 | 第4-5页 |
摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
缩写清单 | 第12-14页 |
1 引言 | 第14-16页 |
2 文献综述 | 第16-42页 |
2.1 癌症及其核酸标志物 | 第16-19页 |
2.1.1 癌症及其核酸标志物概述 | 第16页 |
2.1.2 MiRNA概述 | 第16-18页 |
2.1.3 传统miRNA检测方法 | 第18-19页 |
2.2 基于侧流层析试纸的现场检测技术 | 第19-30页 |
2.2.1 侧流层析试纸的结构与原理 | 第19-21页 |
2.2.2 侧流层析试纸的检测信号 | 第21-24页 |
2.2.3 侧流层析试纸的信号放大 | 第24-27页 |
2.2.4 侧流层析试纸的结构创新 | 第27-28页 |
2.2.5 新型的侧流层析检测 | 第28-30页 |
2.3 基于便携式血糖仪的现场检测技术 | 第30-33页 |
2.3.1 血糖仪的发展史 | 第31页 |
2.3.2 便携式血糖仪在现场检测中的应用 | 第31-33页 |
2.4 基于生物芯片的现场检测技术 | 第33-38页 |
2.4.1 微流控生物芯片 | 第34-36页 |
2.4.2 超浸润生物芯片 | 第36-38页 |
2.5 基于温度计的现场检测技术 | 第38-39页 |
2.6 其他现场检测技术 | 第39-40页 |
2.7 本论文主要研究内容 | 第40-42页 |
3 基于动态限域效应的一维棉线DNA传感器 | 第42-53页 |
3.1 引言 | 第42-43页 |
3.2 实验部分 | 第43-46页 |
3.2.1 材料与试剂 | 第43-44页 |
3.2.2 仪器设备 | 第44页 |
3.2.3 金纳米颗粒(GNPs)及GNPs-DNA复合物的制备 | 第44页 |
3.2.4 SA-DNA复合物的制备 | 第44-45页 |
3.2.5 构建基于温度动态响应的超亲水-疏水图案及探针的固定 | 第45页 |
3.2.6 pCTNAB的构建 | 第45页 |
3.2.7 pCTNAB的检测步骤 | 第45-46页 |
3.3 结果与讨论 | 第46-52页 |
3.3.1 基于温度动态响应的超亲水-疏水图案 | 第46-47页 |
3.3.2 pCTNAB的检测原理 | 第47-48页 |
3.3.3 实验条件优化 | 第48-49页 |
3.3.4 pCTNAB的分析性能 | 第49-52页 |
3.4 小结 | 第52-53页 |
4 仿生DNA-无机杂化纳米花的合成及其在miRNA现场快速检测中的应用 | 第53-67页 |
4.1 引言 | 第53-54页 |
4.2 实验部分 | 第54-56页 |
4.2.1 材料与试剂 | 第54页 |
4.2.2 仪器设备 | 第54-55页 |
4.2.3 DNA-Cu_3(PO_4)_2杂化纳米花的合成 | 第55页 |
4.2.4 DNA2-蔗糖酶复合物的制备 | 第55-56页 |
4.2.5 构建基于棉线的传感设备 | 第56页 |
4.2.6 目标miRNA-21检测 | 第56页 |
4.3 结果与讨论 | 第56-66页 |
4.3.1 DNA-Cu_3(PO_4)_2杂化纳米花的制备及表征 | 第56-60页 |
4.3.2 MiRNA生物传感器的检测原理 | 第60-61页 |
4.3.3 DNA-蔗糖酶复合物的表征 | 第61-62页 |
4.3.4 实验条件优化 | 第62-64页 |
4.3.5 MiRNA传感器的分析性能 | 第64-65页 |
4.3.6 细胞裂解液中miRNA-21的检测 | 第65-66页 |
4.4 小结 | 第66-67页 |
5 三维DNA纳米机器的构建及其在miRNA双模式检测中的应用 | 第67-77页 |
5.1 引言 | 第67-68页 |
5.2 实验部分 | 第68-70页 |
5.2.1 材料与试剂 | 第68页 |
5.2.2 仪器设备 | 第68-69页 |
5.2.3 合成MB-H1复合物 | 第69页 |
5.2.4 合成蔗糖酶-H2复合物 | 第69页 |
5.2.5 MiRNA的检测步骤 | 第69-70页 |
5.2.6 血清中miRNA的检测 | 第70页 |
5.3 结果与讨论 | 第70-76页 |
5.3.1 三维DNA纳米机器的双模式检测原理 | 第70-71页 |
5.3.2 三维DNA纳米机器的可行性分析 | 第71-72页 |
5.3.3 实验条件优化 | 第72-74页 |
5.3.4 三维DNA纳米机器的分析性能 | 第74-76页 |
5.3.5 血清中miRNA的检测 | 第76页 |
5.4 小结 | 第76-77页 |
6 可再生超浸润生物芯片的构建及其在miRNA检测中的应用 | 第77-87页 |
6.1 引言 | 第77-78页 |
6.2 实验部分 | 第78-80页 |
6.2.1 材料与试剂 | 第78页 |
6.2.2 仪器设备 | 第78-79页 |
6.2.3 TiO_2纳米线阵列的合成 | 第79页 |
6.2.4 构建超亲水-超疏水生物芯片 | 第79页 |
6.2.5 构建RSMB | 第79-80页 |
6.2.6 MiRNA检测 | 第80页 |
6.2.7 光催化诱导的可再生性能 | 第80页 |
6.3 结果与讨论 | 第80-86页 |
6.3.1 RSMB的检测原理 | 第80-81页 |
6.3.2 超亲水-超疏水生物芯片的表征 | 第81-82页 |
6.3.3 浓缩富集效应及RSMB的实验条件优化 | 第82-84页 |
6.3.4 RSMN的分析性能 | 第84页 |
6.3.5 光催化诱导的可再生性能 | 第84-86页 |
6.4 小结 | 第86-87页 |
7 结论 | 第87-90页 |
参考文献 | 第90-114页 |
作者简历及在学研究成果 | 第114-118页 |
学位论文数据集 | 第118页 |