| 摘要 | 第3-4页 |
| abstract | 第4-5页 |
| 主要英文缩略词对照表 | 第8-9页 |
| 第1章 前言 | 第9-27页 |
| 1.1 选题背景及意义 | 第9页 |
| 1.2 C.elegans是研究基因表达和功能的理想模型 | 第9-14页 |
| 1.3 转录因子和lncRNA是参与多种活动的关键调节因子 | 第14-16页 |
| 1.4 研究C.elegans基因表达的策略 | 第16-18页 |
| 1.5 应用于C.elegans中的转基因技术 | 第18-21页 |
| 1.6 C.elegans中转录因子和lncRNA的基因表达研究概况 | 第21-22页 |
| 1.7 转基因沉默 | 第22-23页 |
| 1.8 HSN神经细胞和V细胞 | 第23-25页 |
| 1.9 论文研究方法 | 第25-26页 |
| 1.10 论文结构 | 第26-27页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第27-46页 |
| 2.1 实验材料 | 第27-31页 |
| 2.1.1 线虫品系 | 第27-30页 |
| 2.1.2 质粒 | 第30页 |
| 2.1.3 菌株 | 第30页 |
| 2.1.4 主要配制溶液 | 第30-31页 |
| 2.1.5 其它商业化实验试剂 | 第31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-46页 |
| 2.2.1 分子克隆 | 第31-35页 |
| 2.2.2 质粒中提 | 第35-36页 |
| 2.2.3 线虫的培养和冻存 | 第36-37页 |
| 2.2.4 线虫的同步化 | 第37-38页 |
| 2.2.5 线虫的杂交 | 第38页 |
| 2.2.6 线虫基因组的提取 | 第38-39页 |
| 2.2.7 微粒轰击法构建转基因线虫 | 第39-40页 |
| 2.2.8 利用MosSCI构建转基因线虫 | 第40-41页 |
| 2.2.9 利用CRISPR/Cas9系统构建转基因线虫 | 第41-43页 |
| 2.2.10 线虫L1时期3D影像的获取 | 第43-44页 |
| 2.2.11 线虫L1时期单细胞精度表达谱的构建 | 第44页 |
| 2.2.12 线虫活体拍摄 | 第44-45页 |
| 2.2.13 线虫荧光漂白恢复 | 第45-46页 |
| 第3章 转录因子以及lincRNA单细胞精度表达谱的构建 | 第46-71页 |
| 3.1 转录因子和lincRNA的单细胞精度表达谱的构建 | 第46-53页 |
| 3.2 单细胞精度基因表达谱的可信度分析 | 第53-59页 |
| 3.3 转录因子与lincRNA表达特征的比较 | 第59-63页 |
| 3.4 lincRNA时空表达影像数据库的构建 | 第63-69页 |
| 3.4.1 lincRNA时空表达特点 | 第63-67页 |
| 3.4.2 影像数据库的构建 | 第67-69页 |
| 3.5 讨论和总结 | 第69-71页 |
| 第4章 基于单细胞精度表达谱的基因表达研究 | 第71-96页 |
| 4.1 转录因子在HSN神经细胞中广泛的沉默现象 | 第71-88页 |
| 4.1.1 沉默现象的发现和确认 | 第71-81页 |
| 4.1.2 HSN中大范围基因沉默的意义 | 第81-85页 |
| 4.1.3 沉默机制的探究 | 第85-88页 |
| 4.2 转录因子在V5细胞与其它V细胞中差异表达 | 第88-93页 |
| 4.2.1 V5细胞与其它V细胞差异表达的基因的发现和确认 | 第88-90页 |
| 4.2.2 V5细胞中特异高表达的基因对V5细胞发育的影响 | 第90-93页 |
| 4.3 讨论和总结 | 第93-96页 |
| 第5章 总结和展望 | 第96-103页 |
| 5.1 论文总结 | 第96-97页 |
| 5.2 论文展望 | 第97-103页 |
| 5.2.1 建立转录因子以及lincRNA胚后发育的单细胞精度的时空表达谱·· | 第97-98页 |
| 5.2.2 建立单细胞精度的转录调控回路 | 第98-100页 |
| 5.2.3 HSN转基因沉默机制的深入研究 | 第100-101页 |
| 5.2.4 构建影响V5细胞发育的基因调控回路 | 第101-103页 |
| 参考文献 | 第103-111页 |
| 致谢 | 第111-113页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第113页 |
