| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 第一章 重金属离子检测技术现状分析 | 第12-48页 |
| 1.1 重金属离子污染的现状及危害 | 第12-14页 |
| 1.1.1 重金属离子污染的现状 | 第12-14页 |
| 1.1.2 重金属离子污染的危害 | 第14页 |
| 1.2 重金属离子检测技术研究进展 | 第14-36页 |
| 1.2.1 基于自身信号直接分析法 | 第14-18页 |
| 1.2.1.1 原子吸收光谱(AAS) | 第14-15页 |
| 1.2.1.2 原子发射光谱(AES) | 第15页 |
| 1.2.1.3 原子荧光光谱(AFS) | 第15-16页 |
| 1.2.1.4 电感耦合等离子体发射光谱(ICP-OES) | 第16页 |
| 1.2.1.5 电感耦合等离子体质谱法(ICP-MS) | 第16-17页 |
| 1.2.1.6 电化学分析法(ECA) | 第17-18页 |
| 1.2.2 基于配体信号间接分析法 | 第18-36页 |
| 1.2.2.1 免疫分析(IA) | 第18-20页 |
| 1.2.2.2 酶分析法(EA) | 第20-21页 |
| 1.2.2.3 基于有机分子分析法(OMBA) | 第21-24页 |
| 1.2.2.4 基于功能性核酸分析法(FNABA) | 第24-34页 |
| 1.2.2.5 CuAAC点击化学(CuAAC Click Chemistry) | 第34-36页 |
| 1.3 本文研究目的和内容 | 第36-38页 |
| 参考文献 | 第38-48页 |
| 第二章 Hg~(2+)绿色免疫层析电化学分析方法的建立 | 第48-70页 |
| 2.1 引言 | 第49-51页 |
| 2.2 材料与方法 | 第51-55页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第51-52页 |
| 2.2.2 主要仪器设备 | 第52页 |
| 2.2.3 主要缓冲液 | 第52页 |
| 2.2.4 抗体和包被原的制备 | 第52页 |
| 2.2.5 McAb和HRP双重标记AuNPs探针的制备(McAb-HRP-AuNPs) | 第52-53页 |
| 2.2.6 免疫层析试纸条的组装 | 第53-54页 |
| 2.2.7 IEB参数条件的优化 | 第54页 |
| 2.2.8 IEB检测程序 | 第54页 |
| 2.2.9 水样和牛奶中Hg~(2+)的测定 | 第54-55页 |
| 2.3 结果与分析 | 第55-64页 |
| 2.3.1 IEB检测原理 | 第55-57页 |
| 2.3.2 McAb-HRP-AuNPs探针的表征 | 第57-58页 |
| 2.3.3 McAb与HRP标记AuNPs的用量比例 | 第58-59页 |
| 2.3.4 McAb-HRP-AuNPs探针的用量 | 第59-60页 |
| 2.3.5 工作缓冲液和层析时间的优化 | 第60-61页 |
| 2.3.6 Hg~(2+)定量检测 | 第61-62页 |
| 2.3.7 IEB特异性分析 | 第62-63页 |
| 2.3.8 添加回收实验 | 第63页 |
| 2.3.9 IEB性能比较 | 第63-64页 |
| 2.4 本章小结 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-70页 |
| 第三章 基于MarR蛋白的双重热点模式Cu~(2+)表面增强拉曼分析 | 第70-88页 |
| 3.1 引言 | 第71-73页 |
| 3.2 材料与方法 | 第73-77页 |
| 3.2.1 主要试剂 | 第73-74页 |
| 3.2.2 主要仪器设备 | 第74页 |
| 3.2.3 主要缓冲液 | 第74-75页 |
| 3.2.4 MarR的制备 | 第75页 |
| 3.2.5 纳米金(AuNPs)的制备 | 第75-76页 |
| 3.2.6 SERS检测探针(MarR-4MBA-AuNPs的制备 | 第76页 |
| 3.2.7 SERS信号放大探针(McAb-AgNPs)的制备 | 第76页 |
| 3.2.8 Cu~(2+)SERS分析检测步骤 | 第76页 |
| 3.2.9 水样品中Cu~(2+)检测 | 第76-77页 |
| 3.3 结果与分析 | 第77-83页 |
| 3.3.1 Cu~(2+)SERS分析检测原理 | 第77-78页 |
| 3.3.2 Cu~(2+)SERS可行性分析 | 第78-79页 |
| 3.3.3 Cu~(2+)SERS条件优化 | 第79-80页 |
| 3.3.4 Cu~(2+)定量分析 | 第80-82页 |
| 3.3.5 SERS特异性分析 | 第82页 |
| 3.3.6 添加回收实验 | 第82-83页 |
| 3.4 本章小结 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-88页 |
| 第四章 基于MarR功能化纳米金的多路径Cu~(2+)比色分析 | 第88-108页 |
| 4.1 引言 | 第89-91页 |
| 4.2 材料与方法 | 第91-93页 |
| 4.2.1 主要试剂 | 第91页 |
| 4.2.2 主要仪器设备 | 第91-92页 |
| 4.2.3 主要缓冲液 | 第92页 |
| 4.2.4 MarR的制备 | 第92页 |
| 4.2.5 纳米金(AuNPs)的制备 | 第92页 |
| 4.2.6 MarR包裹纳米金探针(M-AuNPs)的制备 | 第92-93页 |
| 4.2.7 Cu~(2+)比色分析检测步骤 | 第93页 |
| 4.2.8 水样品中Cu~(2+)检测 | 第93页 |
| 4.3 结果与分析 | 第93-103页 |
| 4.3.1 Cu~(2+)多路径比色分析检测原理 | 第93-94页 |
| 4.3.2 M-AuNPs检测探针的表征 | 第94-96页 |
| 4.3.3 实验条件的优化 | 第96-98页 |
| 4.3.4 灵敏度分析 | 第98-100页 |
| 4.3.5 特异性分析 | 第100页 |
| 4.3.6 添加回收实验 | 第100-102页 |
| 4.3.7 Cu~(2+)多路径比色分析性能评估 | 第102-103页 |
| 4.4 本章小结 | 第103-104页 |
| 参考文献 | 第104-108页 |
| 第五章 基于点击化学的可视化Cu~(2+)信号放大试纸条检测 | 第108-130页 |
| 5.1 引言 | 第109-112页 |
| 5.2 材料与方法 | 第112-115页 |
| 5.2.1 主要试剂 | 第112页 |
| 5.2.2 主要仪器设备 | 第112-113页 |
| 5.2.3 主要缓冲液 | 第113页 |
| 5.2.4 ssDNA序列 | 第113页 |
| 5.2.5 DNA-AuNPs探针的制备 | 第113-114页 |
| 5.2.6 控制探针的制备 | 第114页 |
| 5.2.7 信号放大层析试纸条(SA-LFTS)的组装 | 第114-115页 |
| 5.2.8 Cu~(2+)视觉检测 | 第115页 |
| 5.2.9 城市用水和河水中Cu~(2+)检测 | 第115页 |
| 5.3 结果与分析 | 第115-124页 |
| 5.3.1 SA-LFTS检测原理 | 第115-116页 |
| 5.3.2 DNA-AuNPs探针1中S1/S2比例 | 第116-117页 |
| 5.3.3 DNA-A和DNA-B的浓度 | 第117页 |
| 5.3.4 DNA-AuNPs探针(1和2)的用量 | 第117-118页 |
| 5.3.5 实验条件优化 | 第118-120页 |
| 5.3.6 Cu~(2+)检测 | 第120-121页 |
| 5.3.7 SA-LFTS特异性分析 | 第121-122页 |
| 5.3.8 添加回收实验 | 第122-124页 |
| 5.3.9 SA-LFTS分析性能比较 | 第124页 |
| 5.4 本章小结 | 第124-126页 |
| 参考文献 | 第126-130页 |
| 第六章 全文总结 | 第130-132页 |
| 6.1 主要结论 | 第130页 |
| 6.2 主要创新点 | 第130页 |
| 6.3 待解决的问题与展望 | 第130-132页 |
| 附录 | 第132-138页 |
| 附录Ⅰ 插图清单 | 第132-136页 |
| 附录Ⅱ 表格清单 | 第136-138页 |
| 致谢 | 第138-140页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第140-141页 |
