| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-25页 |
| 1.1 植物中维生素E的研究进展 | 第12-18页 |
| 1.1.1 维生素E的化学组成和理化性质 | 第12-13页 |
| 1.1.2 维生素E的功能 | 第13-15页 |
| 1.1.3 维生素E的生物合成途径 | 第15-16页 |
| 1.1.4 维生素E合成途径的关键酶 | 第16-18页 |
| 1.2 花生中维生素E的研究进展 | 第18-21页 |
| 1.2.1 我国主产区花生中维生素E的分布 | 第18-19页 |
| 1.2.2 花生维生素E的检测技术 | 第19-21页 |
| 1.3 近红外技术和分子标记在花生上的应用 | 第21-23页 |
| 1.3.1 花生近红外定量分析模型构建 | 第22页 |
| 1.3.2 花生上应用的DNA分子标记 | 第22-23页 |
| 1.4 本研究的目的意义 | 第23-25页 |
| 第二章 高效液相色谱法测定花生中维生素E的含量 | 第25-37页 |
| 2.1 试验材料和方法 | 第25-26页 |
| 2.1.1 花生材料 | 第25-26页 |
| 2.1.2 化学试剂 | 第26页 |
| 2.1.3 仪器和设备 | 第26页 |
| 2.1.4 色谱柱规格 | 第26页 |
| 2.2 试验方法 | 第26-29页 |
| 2.2.1 维生素E异构体标准曲线的构建 | 第26-27页 |
| 2.2.1.1 标准溶液的配制 | 第26-27页 |
| 2.2.1.2 色谱条件 | 第27页 |
| 2.2.1.3 建立标准曲线 | 第27页 |
| 2.2.2 花生维生素E含量的化学测定 | 第27-29页 |
| 2.2.2.1 化学试剂配制 | 第27-28页 |
| 2.2.2.2 实验步骤 | 第28页 |
| 2.2.2.3 色谱条件 | 第28页 |
| 2.2.2.4 样品中维生素E含量计算公式 | 第28-29页 |
| 2.2.2.5 相关性分析和作图 | 第29页 |
| 2.3 结果与分析 | 第29-35页 |
| 2.3.1 维生素E各异构体的色谱图 | 第29-31页 |
| 2.3.1.1 标准曲线方程式 | 第30-31页 |
| 2.3.2 花生中维生素E含量测定结果与分析 | 第31-35页 |
| 2.4 结论与讨论 | 第35-37页 |
| 第三章 花生维生素E近红外模型构建 | 第37-46页 |
| 3.1 材料与方法 | 第37-38页 |
| 3.1.1 材料 | 第37-38页 |
| 3.1.1.1 花生材料 | 第37-38页 |
| 3.1.1.2 仪器设备 | 第38页 |
| 3.1.2 方法 | 第38页 |
| 3.1.2.1 光谱采集 | 第38页 |
| 3.1.2.2 维生素E含量测定 | 第38页 |
| 3.1.2.3 模型构建与优化 | 第38页 |
| 3.2 结果与分析 | 第38-44页 |
| 3.2.1 花生仁中维生素E总量和α-生育酚的近红外多粒模型 | 第38-43页 |
| 3.2.1.1 近红外光谱的采集 | 第39页 |
| 3.2.1.2 花生仁中维生素E总量的化学分析 | 第39页 |
| 3.2.1.3 花生维生素E总量近红外多粒模型的建立 | 第39-40页 |
| 3.2.1.4 近红外模型的预测效果 | 第40-41页 |
| 3.2.1.5 花生仁中α-生育酚的化学分析 | 第41页 |
| 3.2.1.6 花生α-生育酚近红外多粒模型的建立 | 第41-42页 |
| 3.2.1.7 近红外模型的预测效果 | 第42-43页 |
| 3.2.2 花生仁中α-生育酚的近红外单粒模型 | 第43-44页 |
| 3.2.2.1 花生单粒近红外光谱的采集 | 第43页 |
| 3.2.2.2 花生单粒样品中α-生育酚的化学值估测 | 第43页 |
| 3.2.2.3 花生α-生育酚近红外单粒模型的建立 | 第43-44页 |
| 3.2.2.4 花生α-生育酚近红外单粒模型的预测效果 | 第44页 |
| 3.3 结论与讨论 | 第44-46页 |
| 第四章 花生γ-TMT基因的克隆和序列分析 | 第46-62页 |
| 4.1 材料与方法 | 第46-48页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第46页 |
| 4.1.2 感受态和质粒 | 第46页 |
| 4.1.3 试剂耗材 | 第46页 |
| 4.1.4 仪器和设备 | 第46-47页 |
| 4.1.5 主要试剂的配制 | 第47-48页 |
| 4.1.5.1 SDS提取液的配制 | 第47-48页 |
| 4.1.5.1.1 Tris·HCl的配制 | 第47页 |
| 4.1.5.1.2 SDS的配制 | 第47页 |
| 4.1.5.1.3 EDTA的配制 | 第47-48页 |
| 4.1.5.2 LB培养基的配制 | 第48页 |
| 4.1.5.3 1×TAE电泳缓冲液的配制 | 第48页 |
| 4.1.5.4 琼脂糖凝胶的配制 | 第48页 |
| 4.2 试验方法 | 第48-53页 |
| 4.2.1 基因编码区全长的获取 | 第48-49页 |
| 4.2.2 花生子仁DNA提取 | 第49页 |
| 4.2.3 花生γ-TMT基因的克隆 | 第49-53页 |
| 4.2.3.1 引物的设计与合成 | 第49页 |
| 4.2.3.2 花生γ-TMT基因编码区全长的PCR扩增 | 第49-50页 |
| 4.2.3.3 目的片段的胶回收 | 第50-51页 |
| 4.2.3.4 目的片段的连接与转化 | 第51-52页 |
| 4.2.3.4.1 连接反应 | 第51页 |
| 4.2.3.4.2 转化 | 第51-52页 |
| 4.2.3.5 阳性克隆的检测 | 第52-53页 |
| 4.2.3.5.1 PCR方法鉴定阳性单克隆 | 第52页 |
| 4.2.3.5.2 测序鉴定阳性单克隆 | 第52-53页 |
| 4.2.3.6 生物信息学分析 | 第53页 |
| 4.3 结果与分析 | 第53-60页 |
| 4.3.1 花生γ-TMT编码区序列的克隆 | 第53-56页 |
| 4.3.2 花生γ-TMT的生物信息学分析 | 第56-60页 |
| 4.3.2.1 花生γ-TMT编码蛋白的氨基酸序列分析 | 第56-57页 |
| 4.3.2.2 基因编码蛋白的信号肽、亚细胞定位和跨膜域预测 | 第57页 |
| 4.3.2.3 同源基因氨基酸序列比对 | 第57-60页 |
| 4.4 结论与讨论 | 第60-62页 |
| 第五章 不同花生材料γ-TMT基因序列差异及其与维生素E含量的关系 | 第62-67页 |
| 5.1 材料与方法 | 第62-63页 |
| 5.1.0 试验材料 | 第62页 |
| 5.1.1 试剂、耗材、仪器 | 第62-63页 |
| 5.1.2 实验方法 | 第63页 |
| 5.1.2.1 花生γ-TMT基因的克隆 | 第63页 |
| 5.1.2.2γ-TMT编码区核苷酸序列和氨基酸序列比对及与维生素E含量相关性分析 | 第63页 |
| 5.2 结果与分析 | 第63-66页 |
| 5.2.1 花生γ-TMT编码区序列的克隆 | 第63-65页 |
| 5.2.2 不同花生材料γ-TMT基因序列差异及其与维生素E含量的关系 | 第65-66页 |
| 5.3 结论与讨论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-75页 |
| 致谢 | 第75-77页 |
| 硕士学习期间发表论文情况 | 第77页 |
| 第一作者发表论文 | 第77页 |
| 第二作者发表论文 | 第77页 |
