| 摘要 | 第7-8页 |
| Abstract | 第8页 |
| 缩略词表 | 第9-10页 |
| 第1章 引言 | 第10-28页 |
| 1.1 水稻叶夹角 | 第10-11页 |
| 1.1.1 水稻叶夹角的研究意义 | 第10-11页 |
| 1.1.2 水稻叶夹角打开的机制 | 第11页 |
| 1.2 油菜素甾醇研究进展 | 第11-17页 |
| 1.2.1 油菜素甾醇的发现及其生理作用 | 第11-13页 |
| 1.2.2 BR信号通路 | 第13-14页 |
| 拟南芥中的BR信号通路 | 第14页 |
| 水稻中的BR信号通路 | 第14-15页 |
| 1.2.3 BR促进水稻叶夹角打开的机制 | 第15-17页 |
| 1.3 光信号通路研究进展 | 第17-24页 |
| 1.3.1 依赖于PHY的红光信号途径 | 第19-21页 |
| 1.3.2 依赖于CRY的蓝光信号途径 | 第21-22页 |
| 1.3.3 依赖于PHOT的蓝光信号途径 | 第22-24页 |
| 1.4 光信号通路与BR信号通路的互作 | 第24-25页 |
| 1.5 课题的由来及研究思路 | 第25-28页 |
| 第2章 材料与方法 | 第28-45页 |
| 2.1 实验材料 | 第28-31页 |
| 2.1.1 植物材料及培养条件 | 第28-29页 |
| 2.1.2 菌株 | 第29-30页 |
| 2.1.3 质粒载体 | 第30页 |
| 2.1.4 图像及数据分析软件工具 | 第30-31页 |
| 2.1.5 抗生素 | 第31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-45页 |
| 2.2.1 载体的构建 | 第31-38页 |
| 2.2.1.1 引物设计 | 第32页 |
| 2.2.1.2 目的片段的扩增 | 第32页 |
| 2.2.1.3 DNA琼脂糖凝胶电泳 | 第32页 |
| 2.2.1.4 从琼脂糖凝胶中回收纯化DNA | 第32-33页 |
| 2.2.1.5 回收产物DNA和载体质粒的酶切 | 第33-34页 |
| 2.2.1.6 目的DNA片段与线性化载体的连接反应 | 第34页 |
| 2.2.1.7 无缝克隆反应 | 第34-35页 |
| 2.2.1.8 T载体连接反应 | 第35页 |
| 2.2.1.9 大肠杆菌DH5α感受态的制备 | 第35-36页 |
| 2.2.1.10 大肠杆菌DH5α感受态的转化 | 第36-37页 |
| 2.2.1.11 阳性质粒的鉴定 | 第37页 |
| 2.2.1.12 质粒提取 | 第37-38页 |
| 2.2.2 RNA提取 | 第38-39页 |
| 2.2.3 RNA反转录(cDNA第一链的合成) | 第39-40页 |
| 2.2.4 实时荧光定量PCR | 第40页 |
| 2.2.5 Western-blot分析检测植物蛋白表达水平 | 第40-41页 |
| 2.2.6 烟草瞬时转化 | 第41-43页 |
| 2.2.6.1 农杆菌GV3101感受态的制备 | 第41页 |
| 2.2.6.2 农杆菌GV3101感受态的转化 | 第41-42页 |
| 2.2.6.3 烟草瞬时表达 | 第42-43页 |
| 2.2.7 水稻叶夹角测量 | 第43-45页 |
| 2.2.7.1 剑叶夹角测量 | 第43页 |
| 2.2.7.2 第一完全叶测量 | 第43-45页 |
| 第3章 结果与分析 | 第45-56页 |
| 3.1 OsCOP1负调控水稻叶夹角打开 | 第45-47页 |
| 3.2 蓝光受体OsPHOT1正调控水稻叶夹角打开 | 第47-49页 |
| 3.3 OsNPH3可以与OsGSK2互作 | 第49-51页 |
| 3.4 OsNPH3正调控水稻叶夹角打开 | 第51-56页 |
| 第4章 讨论 | 第56-59页 |
| 4.1 总结 | 第56-57页 |
| 4.1.1 蓝光通过其信号途径中的 COP1、PHOT1 以及 NPH3 调控水稻叶夹角的打开 | 第56-57页 |
| 4.1.2 蓝光信号可能通过与 BR 信号协调调控水稻叶夹角的打开 | 第57页 |
| 4.2 展望 | 第57-58页 |
| 4.3 应用 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-69页 |
| 附录 | 第69-78页 |
| 附1.本论文中用到的引物 | 第69-72页 |
| 附2.本论文中所用载体信息 | 第72-75页 |
| 附3.水稻营养液配方 | 第75-76页 |
| 附4.常用缓冲液及培养基配方 | 第76-78页 |
| 致谢 | 第78页 |
