| 主要缩略词表 | 第9-11页 |
| 摘要 | 第11-13页 |
| Abstract | 第13-14页 |
| 第一章 引言 | 第15-23页 |
| 1 番鸭呼肠孤病毒病概况 | 第15-17页 |
| 1.1 MDRV感染雏番鸭的临床症状及病理变化 | 第15-16页 |
| 1.2 MDRV感染雏番鸭导致免疫抑制的研究 | 第16-17页 |
| 2 猴头菇多糖的药理作用研究进展 | 第17-19页 |
| 2.1 免疫调节作用 | 第17-18页 |
| 2.2 抗肿瘤作用 | 第18页 |
| 2.3 抗溃疡作用 | 第18页 |
| 2.4 抗氧化作用 | 第18页 |
| 2.5 降血糖、血脂作用 | 第18-19页 |
| 2.6 抗辐射和抗突变的作用 | 第19页 |
| 3 家禽肠道黏膜免疫概述 | 第19-22页 |
| 3.1 肠道黏膜免疫的效应因子——SIgA | 第19-20页 |
| 3.2 细胞因子与肠道黏膜免疫 | 第20-21页 |
| 3.3 黏膜地址素细胞黏附分子-1与肠道黏膜免疫 | 第21页 |
| 3.4 抗氧化与肠道黏膜免疫 | 第21页 |
| 3.5 其他物质与肠道黏膜免疫 | 第21-22页 |
| 4 本研究的目的及意义 | 第22-23页 |
| 第二章 HEP对MDRV感染雏番鸭肠道黏膜免疫的影响 | 第23-43页 |
| 1 材料和方法 | 第23-25页 |
| 1.1 病毒株、种蛋及实验番鸭 | 第23页 |
| 1.2 试验中药 | 第23页 |
| 1.3 主要试验仪器 | 第23页 |
| 1.4 主要试剂 | 第23-24页 |
| 1.5 相关试剂的配制 | 第24页 |
| 1.6 建立番鸭呼肠孤病毒病自然感染发病模型 | 第24页 |
| 1.7 试验番鸭分组与处理 | 第24页 |
| 1.8 试验番鸭样本的采集与处理 | 第24-25页 |
| 1.9 检测项目及方法 | 第25页 |
| 1.10 数据处理 | 第25页 |
| 2 结果与分析 | 第25-37页 |
| 2.1 试验番鸭肠黏膜SIgA含量变化的检测结果 | 第25-26页 |
| 2.2 试验番鸭肠道组织IFN-α含量变化的检测结果 | 第26-27页 |
| 2.3 试验番鸭肠道组织IFN-β含量变化的检测结果 | 第27-28页 |
| 2.4 试验番鸭肠道组织IFN-γ含量变化的检测结果 | 第28页 |
| 2.5 试验番鸭肠道组织IL-1β含量变化的检测结果 | 第28-29页 |
| 2.6 试验番鸭肠道组织IL-4含量变化的检测结果 | 第29页 |
| 2.7 试验番鸭肠道组织IL-5含量变化的检测结果 | 第29-30页 |
| 2.8 试验番鸭肠道组织IL-6含量变化的检测结果 | 第30-31页 |
| 2.9 试验番鸭肠道组织IL-8含量变化的检测结果 | 第31-32页 |
| 2.10 试验番鸭肠道组织IL-I0含量变化的检测结果 | 第32页 |
| 2.11 试验番鸭肠道组织IL-15含量变化的检测结果 | 第32-33页 |
| 2.12 试验番鸭肠道组织TGF-β含量变化的检测结果 | 第33-34页 |
| 2.13 试验番鸭肠道组织TNF-α含量变化的检测结果 | 第34页 |
| 2.14 试验番鸭肠道组织HIS含量变化的检测结果 | 第34-35页 |
| 2.15 试验番鸭肠黏膜NO含量变化的检测结果 | 第35-36页 |
| 2.16 试验番鸭肠道组织cAMP含量变化的检测结果 | 第36页 |
| 2.17 试验番鸭肠道组织SS含量变化的检测结果 | 第36-37页 |
| 3 讨论 | 第37-43页 |
| 3.1 HEP对MDRV感染番鸭肠黏膜SIgA分泌量的影响 | 第37页 |
| 3.2 HEP对MDRV感染番鸭肠道抗病毒活性因子IFN-α、IFN-β及IFN-γ的影响 | 第37-38页 |
| 3.3 HEP对MDRV感染番鸭肠道免疫调节活性因子IL-4、IL-5、IL-10、IL-15和TGF-β的影响 | 第38-40页 |
| 3.4 HEP对MDRV感染番鸭肠道炎性介导活性因子IL-1β、IL-6、IL-8和TNF-α的影响 | 第40-41页 |
| 3.5 HEP对MDRV感染番鸭肠道中HIS、NO、cAMP、SS的影响 | 第41-43页 |
| 第三章 HEP对MDRV感染雏番鸭肠道及血清中MAdCAM-1分泌的影响 | 第43-46页 |
| 1 材料与方法 | 第43页 |
| 1.1 主要仪器 | 第43页 |
| 1.2 主要试剂 | 第43页 |
| 1.3 试验设计与取样 | 第43页 |
| 1.4 检测项目及方法 | 第43页 |
| 1.5 数据处理 | 第43页 |
| 2 结果分析 | 第43-44页 |
| 2.1 试验番鸭肠道组织MAdCAM-1含量变化的检测结果 | 第43-44页 |
| 2.2 试验番鸭血清MAdCAM-1含量变化的检测结果 | 第44页 |
| 3 讨论 | 第44-46页 |
| 第四章 HEP对MDRV感染雏番鸭肠道抗氧化能力的影响 | 第46-50页 |
| 1 材料与方法 | 第46页 |
| 1.1 主要仪器 | 第46页 |
| 1.2 主要试剂 | 第46页 |
| 1.3 实验设计与取样 | 第46页 |
| 1.4 检测项目及方法 | 第46页 |
| 1.5 数据处理 | 第46页 |
| 2 结果分析 | 第46-48页 |
| 2.1 试验番鸭肠黏膜MDA含量变化的检测结果 | 第46-47页 |
| 2.2 试验番鸭肠黏膜SOD活性变化的检测结果 | 第47-48页 |
| 2.3 试验番鸭肠黏膜GSH含量变化的检测结果 | 第48页 |
| 3 讨论 | 第48-50页 |
| 第五章 HEP对MDRV感染雏番鸭肠道IL-2和IL-6 mRNA表达量的影响 | 第50-63页 |
| 1 材料与方法 | 第50-54页 |
| 1.1 主要仪器 | 第50页 |
| 1.2 主要试剂 | 第50页 |
| 1.3 试验设计与取样 | 第50页 |
| 1.4 相关试剂的配制 | 第50页 |
| 1.5 目的基因引物设计与合成 | 第50-51页 |
| 1.6 肠道组织总RNA的提取 | 第51-52页 |
| 1.7 cDNA的合成 | 第52页 |
| 1.8 目的基因PCR扩增、产物回收及测序鉴定 | 第52-53页 |
| 1.9 GAPDH、IL-2及IL-6基因相对表达量的测定 | 第53-54页 |
| 1.10 数据处理 | 第54页 |
| 2 结果分析 | 第54-62页 |
| 2.1 总RNA电泳结果 | 第54页 |
| 2.2 GAPDH、IL-2及IL-6基因PCR及测序的鉴定结果 | 第54-55页 |
| 2.3 引物特异性分析 | 第55-57页 |
| 2.4. 标准曲线的建立结果 | 第57-60页 |
| 2.5 试验番鸭肠道IL-2 mRNA相对表达量变化的检测结果 | 第60-61页 |
| 2.6 试验番鸭肠道IL-6 mRNA相对表达量变化的检测结果 | 第61-62页 |
| 3 讨论 | 第62-63页 |
| 第六章 全文总结 | 第63-65页 |
| 1 全文结论 | 第63页 |
| 2 本研究创新点 | 第63-64页 |
| 3 有待进一步研究的问题 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-72页 |
| 附录 | 第72-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第82-83页 |
| 附件 | 第83页 |
