摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
第一章 绪论 | 第18-34页 |
1.1 引言 | 第18-20页 |
1.1.1 研究背景 | 第18-19页 |
1.1.2 研究目的和意义 | 第19页 |
1.1.3 项目经费来源 | 第19-20页 |
1.2 植物中聚异戊二烯的研究进展 | 第20-31页 |
1.2.1 植物中顺式聚异戊二烯的研究进展 | 第20-27页 |
1.2.2 植物中TPI的研究进展 | 第27-31页 |
1.3 主要研究目标和研究内容 | 第31-33页 |
1.3.1 研究目标 | 第31页 |
1.3.2 研究内容 | 第31-33页 |
1.4 研究技术路线 | 第33-34页 |
第二章 杜仲胶合成关键基因FPS5的启动子研究 | 第34-57页 |
2.1 材料与方法 | 第34-39页 |
2.1.1 植物材料 | 第34-35页 |
2.1.2 主要试剂和仪器 | 第35-36页 |
2.1.3 试验方法 | 第36-39页 |
2.2 结果与分析 | 第39-54页 |
2.2.1 FPS5转录起始位点的确定 | 第39-42页 |
2.2.2 酵母单杂筛选与FPS5启动子互作的反式作用因子 | 第42-52页 |
2.2.3 乙烯合成及转导途径相关基因与胶合成的相关性 | 第52-54页 |
2.3 讨论 | 第54-55页 |
2.4 小结 | 第55-57页 |
第三章 杜仲胶合成关键酶互作蛋白的鉴定 | 第57-89页 |
3.1 材料与方法 | 第57-62页 |
3.1.1 植物材料 | 第57-58页 |
3.1.2 主要试剂和仪器 | 第58页 |
3.1.3 试验方法 | 第58-62页 |
3.2 结果与分析 | 第62-83页 |
3.2.1 酵母双杂筛选FPS1和FPS5的互作蛋白 | 第62-78页 |
3.2.2 双分子荧光互补验证蛋白互作 | 第78-81页 |
3.2.3 亚细胞定位 | 第81-83页 |
3.3 讨论 | 第83-87页 |
3.4 小结 | 第87-89页 |
第四章 杜仲胶合成过程中lncRNA的鉴定及分析 | 第89-119页 |
4.1 材料和方法 | 第90-93页 |
4.1.1 植物材料 | 第90页 |
4.1.2 主要试剂和仪器 | 第90-91页 |
4.1.3 试验方法 | 第91-93页 |
4.2 结果与分析 | 第93-116页 |
4.2.1 杜仲样品采集及转录组测序 | 第93-95页 |
4.2.2 转录本组装及蛋白编码基因的表达量分析 | 第95-101页 |
4.2.3 lncRNA鉴定、特征及表达分析 | 第101-104页 |
4.2.4 lncRNA的功能预测 | 第104-105页 |
4.2.5 调控杜仲胶生物合成相关基因的lncRNA | 第105-110页 |
4.2.6 杜仲胶合成过程中关键基因FPS5的共表达网络分析 | 第110-114页 |
4.2.7 实时荧光定量PCR验证 | 第114-116页 |
4.3 讨论 | 第116-118页 |
4.4 小结 | 第118-119页 |
第五章 杜仲胶生物合成过程中miRNA的鉴定及分析 | 第119-154页 |
5.1 材料与方法 | 第120-122页 |
5.1.1 植物材料 | 第120页 |
5.1.2 主要试剂和仪器 | 第120页 |
5.1.3 试验方法 | 第120-122页 |
5.2 结果与分析 | 第122-149页 |
5.2.1 RNA提取及转录组测序 | 第122-124页 |
5.2.2 sRNA长度筛选及参考序列比对分析 | 第124-126页 |
5.2.3 sRNA的分类注释 | 第126-139页 |
5.2.4 miRNA的表达特征及靶基因预测 | 第139-145页 |
5.2.5 调控杜仲胶生物合成相关基因的miRNA | 第145-147页 |
5.2.6 杜仲胶合成过程中关键基因FPS5参与的ceRNA网络构建 | 第147-149页 |
5.3 讨论 | 第149-152页 |
5.4 小结 | 第152-154页 |
第六章 结论与展望 | 第154-157页 |
6.1 结论 | 第154-156页 |
6.2 创新点 | 第156页 |
6.3 展望 | 第156-157页 |
参考文献 | 第157-178页 |
在读期间的学术研究 | 第178-180页 |
致谢 | 第180-181页 |