SlNAC8提高转基因拟南芥抗逆性及机制分析
| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 1 文献综述 | 第9-15页 |
| 1.1 非生物胁迫对植物生长发育的影响 | 第9-11页 |
| 1.1.1 干旱 | 第9-10页 |
| 1.1.2 盐碱 | 第10-11页 |
| 1.1.3 低温和冷冻 | 第11页 |
| 1.2 植物对非生物胁迫的抵御 | 第11-12页 |
| 1.2.1 干旱 | 第11-12页 |
| 1.2.2 盐碱 | 第12页 |
| 1.2.3 低温和冷冻 | 第12页 |
| 1.3 NAC转录因子 | 第12-14页 |
| 1.4 本研究的目的及意义 | 第14页 |
| 1.5 本研究的技术路线 | 第14-15页 |
| 2 逆境条件下转基因拟南芥生长指标分析 | 第15-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第15页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第15页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第15页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第15页 |
| 2.2 实验方法 | 第15-17页 |
| 2.2.1 种子的消毒及播种 | 第15-16页 |
| 2.2.2 种子萌发率测定 | 第16页 |
| 2.2.3 根长及侧根数测定 | 第16页 |
| 2.2.4 株高及角果数测定 | 第16-17页 |
| 2.2.5 气孔张开率测定 | 第17页 |
| 2.2.6 存活率及生长状态测定 | 第17页 |
| 2.3 实验结果 | 第17-26页 |
| 2.3.1 种子萌发率 | 第17-19页 |
| 2.3.2 根长及侧根数 | 第19-21页 |
| 2.3.3 株高及角果数 | 第21-22页 |
| 2.3.4 气孔张开率 | 第22-24页 |
| 2.3.5 存活率及生长状态 | 第24-26页 |
| 2.4 讨论 | 第26-28页 |
| 3 逆境条件下转基因拟南芥生理指标分析 | 第28-40页 |
| 3.1 实验材料 | 第28-29页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第28页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第28页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第28-29页 |
| 3.2 实验方法 | 第29-33页 |
| 3.2.1 脯氨酸含量测定 | 第29-30页 |
| 3.2.2 抗氧化酶活性测定 | 第30-31页 |
| 3.2.3 叶绿素荧光测定 | 第31页 |
| 3.2.4 相对电导率测定 | 第31-32页 |
| 3.2.5 丙二醛含量测定 | 第32-33页 |
| 3.3 实验结果 | 第33-38页 |
| 3.3.1 脯氨酸含量 | 第33-34页 |
| 3.3.2 抗氧化酶活性 | 第34-35页 |
| 3.3.3 叶绿素荧光 | 第35-37页 |
| 3.3.4 相对电导率 | 第37页 |
| 3.3.5 丙二醛含量 | 第37-38页 |
| 3.4 讨论 | 第38-40页 |
| 4 转SlNAC8拟南芥抗逆机制分析 | 第40-47页 |
| 4.1 实验材料 | 第40-41页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第40页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第40页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第40-41页 |
| 4.2 实验方法 | 第41-44页 |
| 4.2.1 抗逆相关基因的选择及引物设计 | 第41-42页 |
| 4.2.2 幼苗培养与取材 | 第42页 |
| 4.2.3 总RNA提取及反转录反应 | 第42-43页 |
| 4.2.4 实时荧光定量PCR | 第43-44页 |
| 4.3 实验结果 | 第44-45页 |
| 4.3.1 总RNA的提取及c DNA合成 | 第44页 |
| 4.3.2 实时荧光定量PCR | 第44-45页 |
| 4.4 讨论 | 第45-47页 |
| 结论 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-53页 |
| 附录A 实验所需培养基 | 第53-55页 |
| 附录B DNA Marker | 第55-56页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57页 |
