摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
第一章 绪论 | 第13-31页 |
1.1 前言 | 第13-14页 |
1.2 光声断层扫描成像 | 第14-16页 |
1.2.1 光声断层扫描成像机制 | 第14-15页 |
1.2.2 光声断层扫描成像信号采集 | 第15-16页 |
1.2.2.1 基于线形或平面阵列配置的光声断层扫描 | 第15页 |
1.2.2.2 基于半球形阵列配置的光声断层扫描 | 第15-16页 |
1.2.2.3 基于圆环形阵列配置的光声断层扫描 | 第16页 |
1.3 光声成像剂 | 第16-25页 |
1.3.1 内源性光声成像剂 | 第17-20页 |
1.3.1.1 血红蛋白 | 第17-18页 |
1.3.1.2 脂质 | 第18-20页 |
1.3.1.3 黑色素 | 第20页 |
1.3.1.4 水 | 第20页 |
1.3.2 外源性光声成像剂 | 第20-25页 |
1.3.2.1 有机小分子成像剂 | 第21-22页 |
1.3.2.2 有机高分子成像剂 | 第22-23页 |
1.3.2.3 无机非金属纳米成像剂 | 第23页 |
1.3.2.4 金属纳米成像剂 | 第23-25页 |
1.4 光声断层扫描在生命科学研究中的应用 | 第25-28页 |
1.4.1 PAT在肿瘤研究中的应用 | 第25页 |
1.4.2 PAT在心血管研究中的应用 | 第25-26页 |
1.4.3 PAT在脑部研究中的应用 | 第26-28页 |
1.4.4 PAT在炎症相关疾病研究中的应用 | 第28页 |
1.4.5 PAT在活体代谢动力学研究中的应用 | 第28页 |
1.5 本课题的研究背景、内容、意义和创新之处 | 第28-31页 |
1.5.1 本课题的研究背景 | 第28-29页 |
1.5.2 本课题的研究内容和意义 | 第29-30页 |
1.5.3 本课题的创新点 | 第30-31页 |
第二章 碱性磷酸酶激活的光声成像体系及其对药物诱导的肝损伤和肝损伤修复的成像 | 第31-63页 |
2.1 引言 | 第31-32页 |
2.2 实验部分 | 第32-38页 |
2.2.1 实验原料 | 第32-33页 |
2.2.2 实验仪器 | 第33页 |
2.2.3 实验操作 | 第33-38页 |
2.2.3.1 合成与制备 | 第33-36页 |
2.2.3.2 成像剂C_1X-OR_1在溶液中对ALP响应的光学测试 | 第36页 |
2.2.3.3 成像剂C_1X-OR_1的细胞毒性测试 | 第36页 |
2.2.3.4 流式细胞术测定成像剂C_1X-OR_1在细胞中的摄取与激活 | 第36-37页 |
2.2.3.5 成像剂C_1X-OR_1的细胞成像实验 | 第37页 |
2.2.3.6 C_1X-OR_1脂质体的小鼠活体毒性测试 | 第37页 |
2.2.3.7 APAP诱导肝损伤及N-乙酰半胱氨酸治疗修复肝损伤小鼠模型的建立.. | 第37页 |
2.2.3.8 C_1X-OR_1脂质体对药物诱导小鼠肝损伤及肝损伤修复的光声成像 | 第37-38页 |
2.2.3.9 C_1X-OR_1脂质体对药物诱导小鼠肝损伤及肝损伤修复的荧光成像 | 第38页 |
2.3 结果与讨论 | 第38-61页 |
2.3.1 成像剂C_1X-OR_1及其中间产物和肝靶向磷脂的结构表征 | 第38-46页 |
2.3.2 C_1X-OR_1脂质体的表征 | 第46页 |
2.3.3 成像剂C_1X-OR_1在溶液中对ALP的响应 | 第46-50页 |
2.3.4 成像剂C_1X-OR_1在细胞中对ALP的响应 | 第50-52页 |
2.3.5 C_1X-OR_1脂质体的活体毒性研究 | 第52-54页 |
2.3.6 C_1X-OR_1脂质体对APAP诱导小鼠肝损伤的成像 | 第54-59页 |
2.3.7 C_1X-OR_1脂质体对NAC治疗修复肝损伤小鼠的成像 | 第59-61页 |
2.4 本章小结 | 第61-63页 |
第三章 β-半乳糖苷酶激活的光声成像剂及其对卵巢癌腹腔转移的成像 | 第63-87页 |
3.1 引言 | 第63-64页 |
3.2 实验部分 | 第64-69页 |
3.2.1 实验原料 | 第64页 |
3.2.2 实验仪器 | 第64-65页 |
3.2.3 实验操作 | 第65-69页 |
3.2.3.1 合成与制备 | 第65-66页 |
3.2.3.2 成像剂C_2X-OR_2在溶液中对Gal响应的光学测试 | 第66-67页 |
3.2.3.3 成像剂C_2X-OR_2的细胞毒性测试 | 第67页 |
3.2.3.4 流式细胞术测定成像剂C_2X-OR_2在细胞中的摄取与激活 | 第67页 |
3.2.3.5 成像剂C_2X-OR_2的细胞成像 | 第67-68页 |
3.2.3.6 C_2X-OR_2的小鼠活体毒性测试 | 第68页 |
3.2.3.7 卵巢癌腹腔转移小鼠模型的建立 | 第68页 |
3.2.3.8 C_2X-OR_2对小鼠卵巢癌腹腔转移瘤的光声成像 | 第68-69页 |
3.2.3.9 C_2X-OR_2成像剂对小鼠卵巢癌腹腔转移瘤的荧光成像 | 第69页 |
3.3 结果与讨论 | 第69-85页 |
3.3.1 成像剂C_2X-OR_2及其中间产物的结构表征 | 第69-74页 |
3.3.2 成像剂C_2X-OR_2在溶液中对Gal的响应 | 第74-79页 |
3.3.3 成像剂C_2X-OR_2在细胞中对Gal的响应 | 第79-81页 |
3.3.4 成像剂C_2X-OR_2的活体毒性研究 | 第81-82页 |
3.3.5 成像剂C_2X-OR_2对小鼠卵巢癌腹腔转移的成像 | 第82-85页 |
3.4 本章小结 | 第85-87页 |
第四章 透明质酸酶激活的纳米光声成像体系及其对乳腺癌肺部转移的成像 | 第87-123页 |
4.1 引言 | 第87-88页 |
4.2 实验部分 | 第88-93页 |
4.2.1 实验原料 | 第88-89页 |
4.2.2 实验仪器 | 第89页 |
4.2.3 实验操作 | 第89-93页 |
4.2.3.1 合成与制备 | 第89-91页 |
4.2.3.2 TCHM@HA纳米成像体系在溶液中对HAase响应的光学测试 | 第91-92页 |
4.2.3.3 细胞的培养 | 第92页 |
4.2.3.4 TCHM@HA纳米成像体系的细胞毒性测试 | 第92页 |
4.2.3.5 TCHM@HA纳米成像体系的小鼠活体毒性测试 | 第92页 |
4.2.3.6 乳腺癌肺部转移以及化疗抑制转移的小鼠模型的建立 | 第92-93页 |
4.2.3.7 TCHM@HA纳米成像体系对小鼠乳腺癌肺部转移及化疗抑制转移的光声成像 | 第93页 |
4.2.3.8 RhB@HA对小鼠肺部的荧光成像 | 第93页 |
4.3 结果与讨论 | 第93-122页 |
4.3.1 生色团TCHM及其中间化合物以及改性透明质酸的结构表征 | 第93-99页 |
4.3.2 聚集和解聚集转化机制在生物系统中应用的初探 | 第99-107页 |
4.3.3 TCHM@HA纳米成像体系的表征 | 第107页 |
4.3.4 TCHM@HA纳米成像体系在溶液中对HAase的响应 | 第107-113页 |
4.3.5 TCHM@HA纳米成像体系的细胞毒性研究 | 第113-114页 |
4.3.6 TCHM@HA纳米成像体系的活体毒性研究 | 第114-116页 |
4.3.7 TCHM@HA纳米成像体系对乳腺癌肺部转移的成像 | 第116-121页 |
4.3.8 TCHM@HA纳米成像体系对环磷酰胺抑制乳腺癌转移的追踪成像 | 第121-122页 |
4.4 本章小结 | 第122-123页 |
结论 | 第123-124页 |
参考文献 | 第124-134页 |
攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第134-136页 |
致谢 | 第136-137页 |
附件 | 第137页 |