| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第13-27页 |
| 1.1 酵素 | 第13-14页 |
| 1.1.1 酵素的概述 | 第13页 |
| 1.1.2 酵素的研究现状 | 第13-14页 |
| 1.2 桑葚 | 第14-16页 |
| 1.2.1 桑葚概述 | 第14-15页 |
| 1.2.2 桑葚的营养价值和药用价值 | 第15-16页 |
| 1.2.2.1 抗氧化作用 | 第15页 |
| 1.2.2.2 免疫调节作用 | 第15-16页 |
| 1.2.2.3 降糖、降血脂作用 | 第16页 |
| 1.3 发酵微生物 | 第16-19页 |
| 1.3.1 酵母 | 第16-17页 |
| 1.3.2 醋酸菌 | 第17页 |
| 1.3.3 乳酸菌 | 第17-19页 |
| 1.4 抗氧化性 | 第19-22页 |
| 1.4.1 抗氧化机理 | 第19-20页 |
| 1.4.2 抗氧化表征方法 | 第20-22页 |
| 1.4.2.1 清除DPPH自由基能力测定 | 第20-21页 |
| 1.4.2.2 羟自由基清除能力测定 | 第21页 |
| 1.4.2.3 超氧化物歧化酶(SOD)酶活测定 | 第21页 |
| 1.4.2.4 氧自由基吸收能力(ORAC)测定 | 第21页 |
| 1.4.2.5 总酚含量测定 | 第21-22页 |
| 1.4.2.6 黄酮含量测定 | 第22页 |
| 1.5 花青素生物转化 | 第22-25页 |
| 1.5.1 花青素概述 | 第22-23页 |
| 1.5.2 桑葚花青素 | 第23页 |
| 1.5.3 花青素生物转化的研究进展 | 第23-24页 |
| 1.5.4 花青素的提取纯化 | 第24-25页 |
| 1.5.4.1 花青素的提取 | 第24-25页 |
| 1.5.4.2 花青素的纯化 | 第25页 |
| 1.6 本课题的研究意义及主要研究内容 | 第25-27页 |
| 1.6.1 研究意义 | 第25页 |
| 1.6.2 研究内容 | 第25-27页 |
| 第二章 桑葚酵素的菌种筛选和工艺优化 | 第27-40页 |
| 2.1 实验原料和试剂 | 第27-28页 |
| 2.2 实验主要仪器设备 | 第28页 |
| 2.3 实验方法 | 第28-32页 |
| 2.3.1 桑葚酵素的实验设计及操作要点 | 第28-29页 |
| 2.3.1.1 桑葚酵素的工艺流程 | 第29页 |
| 2.3.1.2 操作要点 | 第29页 |
| 2.3.2 菌种筛选 | 第29-30页 |
| 2.3.2.1 菌种活化 | 第29页 |
| 2.3.2.2 五种乳酸菌在不同pH值条件下生长情况 | 第29-30页 |
| 2.3.2.3 五种乳酸菌在pH值3.5条件下生长情况 | 第30页 |
| 2.3.2.4 五种乳酸菌产乙醇情况 | 第30页 |
| 2.3.3 桑葚酵素发酵单因素实验 | 第30-31页 |
| 2.3.3.1 碳原添加量对桑葚酵素发酵影响 | 第30页 |
| 2.3.3.2 接种量对桑葚酵素发酵的研究 | 第30页 |
| 2.3.3.3 发酵温度对桑葚酵素发酵的影响 | 第30页 |
| 2.3.3.4 桑葚酵素发酵时间的研究 | 第30-31页 |
| 2.3.3.5 感官评价分析 | 第31页 |
| 2.3.4 桑葚酵素发酵工艺参数优化 | 第31-32页 |
| 2.3.5 论证实验 | 第32页 |
| 2.3.6 统计结果与数据处理 | 第32页 |
| 2.4 实验结果与分析 | 第32-38页 |
| 2.4.1 菌种筛选 | 第32-35页 |
| 2.4.1.1 五种乳酸菌在不同pH值条件下生长情况 | 第32-33页 |
| 2.4.1.2 五种乳酸菌在pH值为3.5条件下生长情况 | 第33-34页 |
| 2.4.1.3 五种乳酸菌产乙醇情况 | 第34-35页 |
| 2.4.2 桑葚发酵工艺参数优化实验结果 | 第35-37页 |
| 2.4.2.1 碳原添加量对桑葚酵素发酵影响 | 第35页 |
| 2.4.2.2 接种量对桑葚酵素发酵影响 | 第35-36页 |
| 2.4.2.3 发酵温度对桑葚酵素发酵的影响 | 第36-37页 |
| 2.4.2.4 桑葚酵素发酵时间的研究 | 第37页 |
| 2.4.3 正交实验结果分析 | 第37-38页 |
| 2.4.4 论证实验 | 第38页 |
| 2.5 本章小结 | 第38-40页 |
| 第三章 桑葚酵素生化指标及抗氧化性研究 | 第40-55页 |
| 3.1 实验原料和试剂 | 第40-41页 |
| 3.2 实验主要仪器设备 | 第41-42页 |
| 3.3 实验方法 | 第42-45页 |
| 3.3.1 生化指标 | 第42页 |
| 3.3.1.1 pH值的测定 | 第42页 |
| 3.3.1.2 糖及有机酸的测定 | 第42页 |
| 3.3.2 抗氧化性指标 | 第42-44页 |
| 3.3.2.1 总酚的测定 | 第42页 |
| 3.3.2.2 总黄酮的测定 | 第42-43页 |
| 3.3.2.3 花青素的测定 | 第43页 |
| 3.3.2.4 DPPH自由基清除率测定 | 第43页 |
| 3.3.2.5 羟自由基清除能力测定 | 第43-44页 |
| 3.3.2.6 氧自由基吸收能力(ORAC)的测定 | 第44页 |
| 3.3.3 统计结果与数据处理 | 第44-45页 |
| 3.4 实验结果与分析 | 第45-53页 |
| 3.4.1 生化指标实验结果 | 第45-47页 |
| 3.4.1.1 桑葚酵素发酵过程中pH值变化 | 第45页 |
| 3.4.1.2 桑葚酵素发酵过程中糖的变化 | 第45-46页 |
| 3.4.1.3 桑葚酵素发酵过程中有机酸的变化 | 第46-47页 |
| 3.4.2 抗氧化性指标实验结果 | 第47-53页 |
| 3.4.2.1 总酚含量变化实验结果 | 第47-48页 |
| 3.4.2.2 总黄酮含量变化实验结果 | 第48-49页 |
| 3.4.2.3 花青素含量变化实验结果 | 第49-50页 |
| 3.4.2.4 DPPH自由基清除率实验结果 | 第50-51页 |
| 3.4.2.5 羟自由基清除率实验结果 | 第51-52页 |
| 3.4.2.6 氧自由基吸收能力(ORAC)实验结果 | 第52页 |
| 3.4.2.7 抗氧化相关性分析 | 第52-53页 |
| 3.5 本章小结 | 第53-55页 |
| 第四章 桑葚酵素花青素生物转化的研究 | 第55-68页 |
| 4.1 实验原料和试剂 | 第55页 |
| 4.2 实验主要仪器设备 | 第55-56页 |
| 4.3 实验方法 | 第56-58页 |
| 4.3.1 桑葚花青素的提取纯化 | 第56页 |
| 4.3.2 花青素生物转化的研究 | 第56-58页 |
| 4.3.2.1 简化乳酸菌培养基实验 | 第56-57页 |
| 4.3.2.2 桑葚酵素发酵、植物乳杆菌和花青素共培养 | 第57页 |
| 4.3.2.3 花青素及酚酸含量测定 | 第57页 |
| 4.3.2.4 液相色谱-飞行质谱联用(HPLC-Q-TOF-MS)测定 | 第57-58页 |
| 4.3.3 统计结果与数据处理 | 第58页 |
| 4.4 实验结果与分析 | 第58-67页 |
| 4.4.1 桑葚花青素提取洗脱曲线 | 第58-59页 |
| 4.4.2 植物乳杆菌在不同培养基条件下的生长情况 | 第59-60页 |
| 4.4.3 桑葚酵素及培养液酚酸及花青素变化 | 第60-62页 |
| 4.4.4 液相色谱-飞行质谱联用(HPLC-Q-TOF-MS)测定结果 | 第62-67页 |
| 4.5 本章小结 | 第67-68页 |
| 结论与展望 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-77页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 附件 | 第79页 |
