| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 主要符号对照表 | 第9-10页 |
| 第1章 引言 | 第10-33页 |
| 1.1 果蝇幼虫中枢神经系统简介 | 第10-14页 |
| 1.1.1 果蝇胚胎神经干细胞及其分化特征 | 第11-12页 |
| 1.1.2 果蝇幼虫神经干细胞及其分化特征 | 第12-14页 |
| 1.2 果蝇幼虫视叶发育过程 | 第14-21页 |
| 1.2.1 果蝇视叶神经上皮细胞的发育过程 | 第15页 |
| 1.2.2 果蝇视叶神经上皮细胞的分子特性 | 第15-16页 |
| 1.2.3 果蝇视叶神经干细胞的发育过程及分子特征 | 第16-20页 |
| 1.2.4 哺乳动物神经系统发育中的不对称分裂 | 第20-21页 |
| 1.2.5 果蝇视叶神经板和脑脊神经节的发育过程 | 第21页 |
| 1.3 影响果蝇幼虫视叶 NE-NB 转化过程的信号通路 | 第21-23页 |
| 1.3.1 JAK/STAT 信号通路调控 NE-NB 转化 | 第21-22页 |
| 1.3.2 Notch 信号通路调控 NE-NB 转化 | 第22页 |
| 1.3.3 Fat-Hippo 信号通路调控 NE-NB 转化 | 第22-23页 |
| 1.3.4 Wingless/Wnt 信号通路调控 NE-NB 转化 | 第23页 |
| 1.3.5 EGFR 信号通路调控 NE-NB 转化 | 第23页 |
| 1.4 PcG 蛋白研究进展简介 | 第23-31页 |
| 1.4.1 PcG 蛋白的组成 | 第24-26页 |
| 1.4.2 PcG 蛋白的作用机制 | 第26-27页 |
| 1.4.3 PcG 蛋白的生物学功能 | 第27-30页 |
| 1.4.4 PcG 蛋白研究的目的和意义 | 第30-31页 |
| 1.5 Treh 基因研究进展简介 | 第31-33页 |
| 1.5.1 海藻糖酶和海藻糖简介 | 第31页 |
| 1.5.2 果蝇中 Treh 基因简介 | 第31页 |
| 1.5.3 Treh 基因研究的目的和意义 | 第31-33页 |
| 第2章 材料与方法 | 第33-47页 |
| 2.1 常用的果蝇遗传操作系统 | 第33-38页 |
| 2.1.1 Gal4/UAS 过表达系统 | 第33-35页 |
| 2.1.2 Flip-out 过表达系统 | 第35页 |
| 2.1.3 UAS 果蝇品系的构建 | 第35-37页 |
| 2.1.4 体细胞突变体镶嵌克隆诱导系统 | 第37-38页 |
| 2.2 果蝇品系 | 第38-41页 |
| 2.2.1 Gal4 品系 | 第38-39页 |
| 2.2.2 UAS 品系 | 第39页 |
| 2.2.3 突变体品系 | 第39-40页 |
| 2.2.4 其他工具果蝇品系 | 第40-41页 |
| 2.3 抗体 | 第41-42页 |
| 2.3.1 一抗 | 第41-42页 |
| 2.3.2 二抗 | 第42页 |
| 2.4 实验常用缓冲液及试剂配方 | 第42-44页 |
| 2.5 实验方法 | 第44-47页 |
| 2.5.1 免疫组化 | 第44页 |
| 2.5.2 原位杂交 | 第44-45页 |
| 2.5.3 果蝇总 DNA 的提取 | 第45页 |
| 2.5.4 果蝇总 RNA 的提取 | 第45页 |
| 2.5.5 反转录果蝇总 cDNA | 第45-46页 |
| 2.5.6 荧光定量 PCR 检测 | 第46-47页 |
| 第3章 Ph 蛋白在视叶神经上皮细胞中的作用 | 第47-65页 |
| 3.1 实验方法 | 第47-49页 |
| 3.1.1 果蝇脑视叶上皮细胞 EdU 染色检测 | 第47-48页 |
| 3.1.2 果蝇脑视叶上皮细胞 BrdU 染色检测 | 第48-49页 |
| 3.1.3 电子显微镜样品制备 | 第49页 |
| 3.2 实验结果 | 第49-63页 |
| 3.2.0 Ph、Pc、Psc 蛋白在果蝇脑视叶的表达模式 | 第49-50页 |
| 3.2.1 Ph 蛋白对 medulla 和 lamina 的发育是必需的 | 第50-53页 |
| 3.2.2 Ph 蛋白对 CB 和 VNC 神经干细胞分化没有影响 | 第53-54页 |
| 3.2.3 Ph 蛋白对视叶神经上皮细胞数目的影响 | 第54-56页 |
| 3.2.4 Ph 蛋白对视叶神经上皮细胞连接的维持 | 第56-58页 |
| 3.2.5 Ph 蛋白对视叶神经上皮细胞正常分裂的维持 | 第58-60页 |
| 3.2.6 Ph 蛋白对视叶神经上皮细胞分化的影响 | 第60-63页 |
| 3.3 实验结果讨论 | 第63-65页 |
| 第4章 PcG 蛋白其他组分对神经上皮细胞发育的作用 | 第65-70页 |
| 4.1 实验结果 | 第65-68页 |
| 4.1.1 Su(z)2 蛋白对神经上皮细胞发育的作用 | 第65-66页 |
| 4.1.2 Pc、Sce、Scm 蛋白在神经上皮细胞发育的作用 | 第66-68页 |
| 4.1.3 E(z)和 Su(z)12 蛋白在神经上皮细胞发育的作用 | 第68页 |
| 4.2 实验结果讨论 | 第68-70页 |
| 第5章 PcG 蛋白调控 JAK/STAT 和 Notch 信号通路 | 第70-79页 |
| 5.1 实验方法 | 第70页 |
| 5.1.1 荧光定量 PCR 引物序列 | 第70页 |
| 5.2 实验结果 | 第70-77页 |
| 5.2.1 Ph 蛋白抑制果蝇脑视叶 JAK/STAT 信号通路 | 第70-72页 |
| 5.2.2 Ph 蛋白维持果蝇脑视叶 Notch 信号通路 | 第72-74页 |
| 5.2.3 Pc 蛋白对视叶 JAK/STAT 和 Notch 信号通路的影响 | 第74-75页 |
| 5.2.4 Ph 蛋白通过 JAK/STAT 信号通路调控上皮细胞的分化 | 第75-77页 |
| 5.3 实验结果讨论 | 第77-79页 |
| 第6章 PcG 蛋白调控视叶 Hox 基因的表达 | 第79-86页 |
| 6.1 实验结果 | 第79-85页 |
| 6.1.1 Ph 蛋白抑制果蝇脑 Hox 基因的表达 | 第79-81页 |
| 6.1.2 PcG 蛋白其他组分对 Hox 基因的抑制 | 第81-82页 |
| 6.1.3 Hox 基因对视叶神经上皮细胞发育的影响 | 第82-84页 |
| 6.1.4 Ph 蛋白抑制分节基因在视叶的表达 | 第84-85页 |
| 6.2 实验结果讨论 | 第85-86页 |
| 第7章 Treh 基因在视叶神经上皮细胞的作用 | 第86-99页 |
| 7.1 实验方法 | 第86-89页 |
| 7.1.1 Treh 基因过表达果蝇品系的构建 | 第86-87页 |
| 7.1.2 Treh 基因缺失突变体的构建 | 第87-88页 |
| 7.1.3 显微注射转基因果蝇 | 第88页 |
| 7.1.4 Treh 基因过表达品系 PCR 引物序列 | 第88-89页 |
| 7.1.5 荧光定量 PCR 引物序列 | 第89页 |
| 7.1.6 Treh 缺失突变体检测 PCR 引物序列 | 第89页 |
| 7.2 实验结果 | 第89-98页 |
| 7.2.1 Treh 基因对 lamina 和 medulla 的发育是必需的 | 第89-90页 |
| 7.2.2 Treh 基因对视叶神经上皮细胞的维持 | 第90-93页 |
| 7.2.3 Treh 基因缺失突变体的构建和表型检测 | 第93-96页 |
| 7.2.4 Treh 基因过表达不影响视叶发育 | 第96-97页 |
| 7.2.5 Treh 基因对上皮细胞的调控与海藻糖代谢无直接关联 | 第97-98页 |
| 7.3 实验结果讨论 | 第98-99页 |
| 第8章 结论与展望 | 第99-105页 |
| 8.1 PcG 蛋白在视叶神经上皮细胞维持和转化中的作用 | 第99-103页 |
| 8.1.1 PcG 蛋白调控视叶神经上皮细胞的稳定性 | 第99-100页 |
| 8.1.2 PcG 蛋白调控视叶神经上皮细胞的增殖 | 第100页 |
| 8.1.3 PcG 蛋白促进视叶神经上皮细胞的分化 | 第100-101页 |
| 8.1.4 PcG 蛋白能够调控视叶神经细胞的类型 | 第101-102页 |
| 8.1.5 PcG 蛋白作用的组织特异性 | 第102-103页 |
| 8.2 Treh 基因在视叶神经上皮细胞维持和转化中的作用 | 第103-105页 |
| 参考文献 | 第105-114页 |
| 致谢 | 第114-116页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术文论与研究成果 | 第116页 |
