| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 1 绪论 | 第14-33页 |
| 1.1 课题背景 | 第14-15页 |
| 1.2 微生物电化学系统 | 第15-24页 |
| 1.2.1 微生物电化学系统的定义及分类 | 第15-17页 |
| 1.2.2 微生物电化学系统性能的影响因素 | 第17-20页 |
| 1.2.3 微生物电化学系统的应用 | 第20-24页 |
| 1.3 生物阴极 | 第24-29页 |
| 1.3.1 生物阴极概述 | 第24-25页 |
| 1.3.2 生物阴极中的电子传递途径 | 第25-27页 |
| 1.3.3 电化学活性细菌生物膜的形成机制 | 第27-29页 |
| 1.4 生物阴极在污染物降解中的应用 | 第29-30页 |
| 1.4.1 生物阴极处理无机污染物 | 第29页 |
| 1.4.2 生物阴极降解有机污染物 | 第29-30页 |
| 1.5 存在的问题与研究思路 | 第30-31页 |
| 1.6 研究内容与技术路线 | 第31-33页 |
| 1.6.1 研究内容 | 第31-32页 |
| 1.6.2 技术路线 | 第32-33页 |
| 2 电化学活性细菌的筛选与驯化 | 第33-47页 |
| 2.1 实验材料与方法 | 第33-40页 |
| 2.1.1 实验试剂及营养液组成 | 第33-35页 |
| 2.1.2 实验材料 | 第35-37页 |
| 2.1.3 亲氢气自养菌的筛选方法 | 第37-39页 |
| 2.1.4 电化学活性细菌的驯化方法 | 第39页 |
| 2.1.5 分析测试方法 | 第39-40页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第40-45页 |
| 2.2.1 亲氢气自养菌的筛选 | 第40-43页 |
| 2.2.2 电化学活性细菌的驯化 | 第43-45页 |
| 2.3 本章小结 | 第45-47页 |
| 3 生物阴极的构建与优化 | 第47-70页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第48-52页 |
| 3.1.1 实验试剂及营养液组成 | 第48页 |
| 3.1.2 实验材料 | 第48页 |
| 3.1.3 反应器结构 | 第48页 |
| 3.1.4 生物阴极构建方法 | 第48-50页 |
| 3.1.5 生物阴极优化实验 | 第50-51页 |
| 3.1.6 分析测试方法 | 第51-52页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第52-68页 |
| 3.2.1 生物阴极的构建 | 第52-55页 |
| 3.2.2 生物阴极对活性蓝13的去除 | 第55-62页 |
| 3.2.3 生物阴极对五氯苯酚的去除 | 第62-68页 |
| 3.3 本章小结 | 第68-70页 |
| 4 生物阴极电子传递机制 | 第70-88页 |
| 4.1 实验材料与方法 | 第70-74页 |
| 4.1.1 实验试剂及营养液组成 | 第70页 |
| 4.1.2 反应器结构及实验材料 | 第70-71页 |
| 4.1.3 生物阴极构建方法 | 第71页 |
| 4.1.4 电子传递机制的考查 | 第71-73页 |
| 4.1.5 分析测试方法 | 第73页 |
| 4.1.6 生物阴极菌落分析方法 | 第73-74页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第74-86页 |
| 4.2.1 电化学活性细菌对阴极电子转移的催化作用 | 第74-76页 |
| 4.2.2 电化学活性细菌对五氯苯酚电化学降解的催化作用 | 第76-81页 |
| 4.2.3 电化学活性细菌分泌物对阴极电子传递的影响 | 第81-83页 |
| 4.2.4 生物阴极菌落组成及其电子传递机制分析 | 第83-86页 |
| 4.3 本章小结 | 第86-88页 |
| 5 电化学活性细菌生物膜的形成机制与动力学研究 | 第88-119页 |
| 5.1 实验材料与方法 | 第89-99页 |
| 5.1.1 实验试剂及营养液组成 | 第89-90页 |
| 5.1.2 接种细菌及实验材料 | 第90-91页 |
| 5.1.3 反应器及测试装置 | 第91-93页 |
| 5.1.4 电化学活性细菌生物膜厚度原位测试方法 | 第93-95页 |
| 5.1.5 生物膜测试方法的可行性验证 | 第95-97页 |
| 5.1.6 Shewanella oneidensis MR-1生物膜形成机制研究 | 第97-98页 |
| 5.1.7 分析测试方法 | 第98-99页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第99-117页 |
| 5.2.1 不同电解液的渐近曲线 | 第99-101页 |
| 5.2.2 核黄素的电化学表征及扩散层的确定 | 第101-104页 |
| 5.2.3 激光共聚焦扫描显微镜验证生物膜厚度测试结果 | 第104-106页 |
| 5.2.4 氧气对Shewanella oneidensis MR-1生物膜形成的影响 | 第106-108页 |
| 5.2.5 电极电势对Shewanella oneidensis MR-1生物膜形成的影响 | 第108-110页 |
| 5.2.6 乳酸钠对Shewanella oneidensis MR-1生物膜形成的影响 | 第110-112页 |
| 5.2.7 核黄素对Shewanella oneidensis MR-1生物膜形成的影响 | 第112-114页 |
| 5.2.8 Shewanella oneidensis MR-1生长动力学分析 | 第114-117页 |
| 5.3 本章小结 | 第117-119页 |
| 6 基于生物阴极的微生物燃料电池堆栈在活性蓝13降解中的应用 | 第119-138页 |
| 6.1 实验材料与方法 | 第120-125页 |
| 6.1.1 实验试剂及营养液组成 | 第120页 |
| 6.1.2 实验材料 | 第120-121页 |
| 6.1.3 反应器结构 | 第121-122页 |
| 6.1.4 反应器启动方法 | 第122-123页 |
| 6.1.5 微生物燃料电池堆栈降解活性蓝13实验设计 | 第123-125页 |
| 6.1.6 分析测试方法 | 第125页 |
| 6.2 结果与讨论 | 第125-136页 |
| 6.2.1 微生物燃料电池堆栈的启动 | 第125-128页 |
| 6.2.2 微生物燃料电池堆栈运行条件优化 | 第128-133页 |
| 6.2.3 不同反应器对活性蓝13去除效果的比较 | 第133-136页 |
| 6.3 本章小结 | 第136-138页 |
| 7 结论与建议 | 第138-141页 |
| 7.1 主要结论 | 第138-139页 |
| 7.2 创新点 | 第139页 |
| 7.3 存在问题与建议 | 第139-141页 |
| 参考文献 | 第141-161页 |
| 作者简历 | 第161页 |
