| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 引言 | 第9-25页 |
| 1.1 激活标签技术 | 第9-14页 |
| 1.1.1 植物中功能获得遗传学的发展 | 第9-10页 |
| 1.1.2 激活标签技术在基因功能研究中的应用 | 第10-12页 |
| 1.1.3 本研究中使用的激活标签系统 | 第12-14页 |
| 1.2 MATE蛋白家族的研究进展 | 第14-18页 |
| 1.2.1 人类MATEs的分子特点 | 第14-15页 |
| 1.2.2 植物中的MATE转运蛋白 | 第15-18页 |
| 1.3 植物叶片衰老的研究进展 | 第18-23页 |
| 1.3.1 叶片衰老起始的信号 | 第18-19页 |
| 1.3.2 环境因子调节的叶片衰老中的信号转导 | 第19-20页 |
| 1.3.3 叶片衰老过程中叶绿素代谢的通路 | 第20-22页 |
| 1.3.4 衰老基因中的更多突变体 | 第22-23页 |
| 1.3.5 衰老与病原菌感染的超敏感性之间的关系 | 第23页 |
| 1.4 本论文的研究目的和意义 | 第23-25页 |
| 第二章 材料与方法 | 第25-32页 |
| 2.1 实验材料 | 第25页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第25页 |
| 2.1.2 菌种和载体 | 第25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-32页 |
| 2.2.1 表型分析 | 第25-26页 |
| 2.2.2 SDS碱裂解法制备质粒DNA | 第26页 |
| 2.2.3 质粒转化感受态大肠杆菌 | 第26页 |
| 2.2.4 质粒转化感受态农杆菌 | 第26-27页 |
| 2.2.5 农杆菌介导的花侵染法 | 第27页 |
| 2.2.6 CTAB法提取植物组织DNA | 第27页 |
| 2.2.7 RNA的提取 | 第27-28页 |
| 2.2.8 反转录 | 第28页 |
| 2.2.9 制备大肠杆菌感受态细胞 | 第28-29页 |
| 2.2.10 制备农杆菌感受态细胞 | 第29页 |
| 2.2.11 原生质体的分离与转化 | 第29-30页 |
| 2.2.12 叶绿素含量的测定 | 第30页 |
| 2.2.13 TAIL-PCR | 第30-32页 |
| 第三章 结果 | 第32-42页 |
| 3.1 突变体es2-D的获得 | 第32-33页 |
| 3.2 突变体es2-D的表型分析 | 第33-36页 |
| 3.2.1 根长 | 第33页 |
| 3.2.2 株高、分枝数目和节间长度 | 第33-34页 |
| 3.2.3 开花时间 | 第34页 |
| 3.2.4 叶片的大小 | 第34-36页 |
| 3.2.5 果荚和种子 | 第36页 |
| 3.3 突变体es2-D的基因克隆 | 第36-38页 |
| 3.4 ES2基因的生物信息学分析 | 第38-39页 |
| 3.5 ES2基因的表达模式和蛋白定位 | 第39-40页 |
| 3.6 与衰老相关的研究 | 第40-42页 |
| 3.6.1 在正常条件下es2-D突变体的叶片衰老提前 | 第40-41页 |
| 3.6.2 黑暗诱导加速es2-D突变体幼苗的衰老 | 第41-42页 |
| 第四章 讨论 | 第42-45页 |
| 4.1 突变体es2-D表型产生的原因 | 第42页 |
| 4.2 ES2蛋白可能的功能 | 第42-43页 |
| 4.3 ES2在叶片衰老过程中所起的作用 | 第43页 |
| 4.4 MATE转运蛋白家族 | 第43-45页 |
| 第五章 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-54页 |
| 致谢 | 第54页 |