| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-18页 |
| 1 前言 | 第11-13页 |
| 1.1 我国罗非鱼产业现状 | 第11页 |
| 1.2 我国罗非鱼养殖现状 | 第11-12页 |
| 1.3 我国罗非鱼产业面临的问题 | 第12-13页 |
| 2 线粒体DNA(mtDNA)及其研究概况 | 第13-15页 |
| 2.1 线粒体DNA的结构组成 | 第13页 |
| 2.2 mtDNA控制区、CoI、Cyt b基因的属性 | 第13-15页 |
| 3 微卫星DNA及其研究概况 | 第15-16页 |
| 3.1 微卫星DNA | 第15页 |
| 3.2 微卫星标记在生物学研究的应用 | 第15-16页 |
| 4 本研究的目的与意义 | 第16-18页 |
| 第二章 基于线粒体DNA基因序列分析不同群体的奥利亚罗非鱼遗传多样性 | 第18-41页 |
| 2.1 实验材料、试剂及仪器 | 第18-19页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第18页 |
| 2.1.2 实验主要试剂 | 第18-19页 |
| 2.1.3 实验主要仪器 | 第19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-22页 |
| 2.2.1 奥利亚罗非鱼总DNA的提取 | 第19-20页 |
| 2.2.2 引物合成 | 第20页 |
| 2.2.3 PCR扩增 | 第20-21页 |
| 2.2.4 PCR扩增产物回收、测序 | 第21-22页 |
| 2.2.5 数据分析 | 第22页 |
| 2.3 结果与分析 | 第22-37页 |
| 2.3.1 线粒体DNA D-loop区基因序列分析结果 | 第22-23页 |
| 2.3.2 线粒体DNACoI基因序列分析结果 | 第23-24页 |
| 2.3.3 线粒体DNA Cytb基因序列分析结果 | 第24-25页 |
| 2.3.4 序列单倍型分析 | 第25-28页 |
| 2.3.5 mtDNA D-loop区基因的单倍型系统发育树 | 第28-31页 |
| 2.3.6 mtDNA COI基因的单倍型系统发育树 | 第31-34页 |
| 2.3.7 mtDNA Cytb基因的单倍型系统发育树 | 第34-37页 |
| 2.4 讨论 | 第37-39页 |
| 2.4.1 两个奥利亚罗非鱼群体mtDNA基因序列的遗传变异分析 | 第37页 |
| 2.4.2 两个奥利亚罗非鱼群体mtDNA基因序列的遗传多样性 | 第37-38页 |
| 2.4.3 系统发育建树方法的选择 | 第38-39页 |
| 2.4.4 奥利亚罗非鱼单倍型系统进化树分析 | 第39页 |
| 2.5. 结论 | 第39-41页 |
| 第三章 基于微卫星分子标记对奥利亚罗非鱼遗传多样性的研究 | 第41-54页 |
| 3.1 实验材料、试剂及仪器 | 第41-42页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第41页 |
| 3.1.2 实验主要试剂 | 第41-42页 |
| 3.1.3 实验主要仪器 | 第42页 |
| 3.2 实验方法 | 第42-46页 |
| 3.2.1 奥利亚罗非鱼总DNA的提取 | 第42页 |
| 3.2.2 引物合成 | 第42-43页 |
| 3.2.3 PCR扩增 | 第43-44页 |
| 3.2.4 PCR扩增产物检测 | 第44页 |
| 3.2.5 聚丙烯酰胺凝胶板的制备 | 第44-45页 |
| 3.2.6 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第45页 |
| 3.2.7 银染显色 | 第45页 |
| 3.2.8 结果记录及数据分析 | 第45-46页 |
| 3.3 结果与分析 | 第46-50页 |
| 3.3.1 PAGE凝胶电泳结果 | 第46-47页 |
| 3.3.2 奥利亚罗非鱼群体位点多态性分析 | 第47-49页 |
| 3.3.3 奥利亚罗非鱼群体的遗传分化与基因流 | 第49-50页 |
| 3.4 讨论 | 第50-53页 |
| 3.4.1 尼罗罗非鱼微卫星引物在奥利亚罗非鱼中的适用性 | 第50-51页 |
| 3.4.2 奥利亚罗非鱼群体的遗传多样性 | 第51-52页 |
| 3.4.3 影响奥利亚罗非鱼种群的因素 | 第52-53页 |
| 3.5 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-63页 |
| 附录 | 第63-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第65页 |
