摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5页 |
1 绪论 | 第9-27页 |
1.1 引言 | 第9-10页 |
1.2 生物标识荧光染料简介 | 第10-17页 |
1.2.1 荧光产生的基本原理 | 第10-11页 |
1.2.2 物质荧光的影响因素 | 第11-12页 |
1.2.3 荧光标记方法分类 | 第12-13页 |
1.2.4 荧光染料分类 | 第13-15页 |
1.2.5 生物应用近红外荧光染料 | 第15-17页 |
1.3 菁染料简介 | 第17-22页 |
1.3.1 菁染料的结构特征 | 第17-18页 |
1.3.2 菁染料的合成方法 | 第18-19页 |
1.3.3 菁染料的自聚 | 第19-20页 |
1.3.4 菁染料的光稳定性 | 第20-22页 |
1.3.5 菁染料的水溶性 | 第22页 |
1.4 酞菁染料简介 | 第22-23页 |
1.5 近红外菁染料的生物应用进展 | 第23-26页 |
1.5.1 非共价键合荧光标记 | 第24-25页 |
1.5.2 共价标记荧光标记 | 第25-26页 |
1.6 课题研究的意义 | 第26-27页 |
2 五甲川菁染料的合成及生物应用 | 第27-43页 |
2.1 引言 | 第27页 |
2.2 实验部分 | 第27-32页 |
2.2.1 实验仪器及试剂 | 第27-28页 |
2.2.2 合成路线 | 第28页 |
2.2.3 中间体1的合成 | 第28-29页 |
2.2.4 中间体2的合成 | 第29页 |
2.2.5 中间体3的合成 | 第29-30页 |
2.2.6 中间体4的合成 | 第30页 |
2.2.7 中间体5的合成 | 第30-31页 |
2.2.8 Cy5-NHS2的合成 | 第31页 |
2.2.9 Cy5-NHS1的合成 | 第31-32页 |
2.3 Cy5-NHS的光谱测定 | 第32-35页 |
2.3.1 染料母液的制备 | 第32页 |
2.3.2 Cy5-NHS在不同溶剂当中的吸收发射光谱 | 第32-33页 |
2.3.3 Cy5-NHS在的溶解度测试 | 第33页 |
2.3.4 Cy5-NHS的光稳定性测试 | 第33-34页 |
2.3.5 Cy5-NHS荧光量子产率的计算方法 | 第34页 |
2.3.6 Cy5-NHS与Mito Tracker Green对MCF-7活细胞的复染 | 第34-35页 |
2.4 结果与讨论 | 第35-42页 |
2.4.1 染料的合成 | 第35页 |
2.4.2 Cy5-NHS染料的光谱性能 | 第35-37页 |
2.4.3 Cy5-NHS染料的聚集 | 第37-38页 |
2.4.4 Cy5-NHS染料的光稳定性 | 第38页 |
2.4.5 标记条件的优化 | 第38-39页 |
2.4.6 Cy5-NHS与BSA作用的工作曲线 | 第39-40页 |
2.4.7 BSA的最低检测限测定 | 第40-41页 |
2.4.8 Cy5-NHS的细胞成像效果 | 第41-42页 |
2.5 本章小结 | 第42-43页 |
3 轴向铝酞菁的合成及生物应用 | 第43-50页 |
3.1 引言 | 第43页 |
3.2 实验部分 | 第43-45页 |
3.2.1 实验仪器及试剂 | 第43页 |
3.2.2 合成路线 | 第43-44页 |
3.2.3 PcAlCl的合成 | 第44页 |
3.2.4 PcAlR的合成 | 第44-45页 |
3.3 PcAlR的光谱测定 | 第45-46页 |
3.3.1 染料母液的制备 | 第45页 |
3.3.2 PcAlR在不同溶剂当中的发射光谱 | 第45页 |
3.3.3 PcAlR染料的pH滴定 | 第45-46页 |
3.3.4 PcAlR对MCF-7细胞的成像效果 | 第46页 |
3.4 结果与讨论 | 第46-49页 |
3.4.1 染料的合成 | 第46页 |
3.4.2 PcAlR的光谱性能 | 第46-48页 |
3.4.3 PcAlR在MCF-7细胞中的成像 | 第48-49页 |
3.5 本章小结 | 第49-50页 |
结论 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-55页 |
致谢 | 第55-57页 |
附录 化合物结构表征 | 第57-60页 |