摘要 | 第10-12页 |
Abstract | 第12-13页 |
第1章 绪论 | 第14-30页 |
1.1 海洋污染概述 | 第14-20页 |
1.1.1 海洋石油污染 | 第14-17页 |
1.1.2 海洋重金属污染 | 第17-20页 |
1.2 生物标志物 | 第20-26页 |
1.2.1 生物标志物定义及分类 | 第20-21页 |
1.2.2 生物标志物特点 | 第21页 |
1.2.3 海洋污染监测中常见的生物标志物 | 第21-26页 |
1.3 LAMP方法概述 | 第26-28页 |
1.4 本研究的意义、目的及主要内容 | 第28-30页 |
1.4.1 研究意义 | 第28页 |
1.4.2 研究目的 | 第28页 |
1.4.3 研究内容 | 第28-30页 |
第2章 LAMP技术检测CYP1A基因表达方法的建立 | 第30-47页 |
2.1 材料 | 第30-31页 |
2.1.1 实验动物 | 第30页 |
2.1.2 主要试剂 | 第30页 |
2.1.3 主要仪器 | 第30-31页 |
2.2 实验方法 | 第31-36页 |
2.2.1 验证实验 | 第31页 |
2.2.2 实验样品准备 | 第31-33页 |
2.2.3 real-time PCR及LAMP引物设计 | 第33-34页 |
2.2.4 LAMP反应体系及条件的优化 | 第34-35页 |
2.2.5 LAMP定量方法 | 第35-36页 |
2.2.6 real-time PCR定量方法 | 第36页 |
2.2.7 数据处理 | 第36页 |
2.3 实验结果 | 第36-44页 |
2.3.1 引物验证结果 | 第36-37页 |
2.3.2 LAMP反应体系优化结果 | 第37-41页 |
2.3.3 CYP1A的LAMP定量方法的建立 | 第41-44页 |
2.4 讨论 | 第44-47页 |
2.4.1 LAMP标准体系的优化 | 第44-45页 |
2.4.2 LAMP定量方法的可行性及优势 | 第45-47页 |
第3章 原油WSF、Cd、Pb单独污染后褐菖鲉肝CYP1A基因的表达 | 第47-55页 |
3.1 材料与方法 | 第47页 |
3.1.1 实验动物 | 第47页 |
3.1.2 主要试剂 | 第47页 |
3.1.3 主要仪器 | 第47页 |
3.2 实验方法 | 第47-48页 |
3.2.1 污染实验 | 第47-48页 |
3.2.2 实验样品准备 | 第48页 |
3.2.3 LAMP技术定量检测CYP1A mRNA表达 | 第48页 |
3.2.4 数据处理 | 第48页 |
3.3 实验结果 | 第48-51页 |
3.3.1 原油WSF单独暴露后褐菖鲉肝CYP1A基因表达变化 | 第48-49页 |
3.3.2 Cd、Pb单独暴露后褐菖鲉肝CYP1A基因表达变化 | 第49-51页 |
3.4 讨论 | 第51-55页 |
3.4.1 原油WSF单独暴露对褐菖鲉肝CYP1A mRNA表达的影响 | 第51-52页 |
3.4.2 Cd、Pb单独暴露对褐菖鲉肝CYP1A mRNA表达的影响 | 第52-55页 |
第4章 LAMP定量技术检测原油与Cd、Pb复合污染后褐菖鲉肝CYP1A基因的表达 | 第55-67页 |
4.1 材料 | 第55页 |
4.1.1 实验动物 | 第55页 |
4.1.2 主要仪器 | 第55页 |
4.1.3 主要试剂 | 第55页 |
4.2 实验方法 | 第55-57页 |
4.2.1 以SYBR Green Ⅰ为染料的LAMP方法的建立 | 第55-56页 |
4.2.2 原油WSF和Cd、Pb复合污染实验 | 第56-57页 |
4.2.3 LAMP技术定量检测CYP1A mRNA表达 | 第57页 |
4.2.4 数据处理 | 第57页 |
4.3 实验结果 | 第57-62页 |
4.3.1 LAMP反应产物荧光测定相关因素的优化 | 第57-58页 |
4.3.2 定量LAMP标准曲线 | 第58页 |
4.3.3 WSF及Cd、Pb复合暴露后褐菖鲉肝CYP1A mRNA的表达变化 | 第58-62页 |
4.4 讨论 | 第62-67页 |
第5章 结论与展望 | 第67-70页 |
5.1 结论 | 第67页 |
5.2 创新点 | 第67-68页 |
5.3 展望 | 第68-70页 |
参考文献 | 第70-82页 |
发表文章及参加课题 | 第82-83页 |
致谢 | 第83页 |