| 摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-17页 |
| 1.1 植物叶色突变体概述 | 第11-14页 |
| 1.1.1 植物叶色突变体的来源和分类 | 第11-12页 |
| 1.1.2 叶色突变的分子机制 | 第12-13页 |
| 1.1.3 叶色突变体的遗传模式研究 | 第13-14页 |
| 1.1.4 叶色突变体的应用价值 | 第14页 |
| 1.2 植物基因组学概述 | 第14-15页 |
| 1.2.1 基因组学 | 第14页 |
| 1.2.2 植物功能基因组学的研究策略及方法 | 第14页 |
| 1.2.3 功能基因组学在植物中的研究技术进展 | 第14-15页 |
| 1.3 转录组测序及实际应用 | 第15-16页 |
| 1.3.1 转录组学 | 第15页 |
| 1.3.2 转录组测序在植物中的应用 | 第15-16页 |
| 1.4 本研究的目的与意义 | 第16-17页 |
| 第二章 白菜黄化突变体与野生型的生理特性分析 | 第17-23页 |
| 2.1 材料与方法 | 第17-19页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第17页 |
| 2.1.2 试验方法 | 第17-19页 |
| 2.2 结果与分析 | 第19-22页 |
| 2.2.1 黄化突变体lcm2与野生型FT干重分析 | 第19页 |
| 2.2.2 黄化突变体lcm2与野生型FT光合色素含量分析 | 第19-20页 |
| 2.2.3 黄化突变体lcm2与野生型FT光合特性分析 | 第20页 |
| 2.2.4 黄化突变体lcm2与野生型FT叶绿素荧光参数分析 | 第20-21页 |
| 2.2.5 黄化突变体lcm2与野生型FT叶绿体超微结构 | 第21-22页 |
| 2.3 小结 | 第22-23页 |
| 第三章 白菜叶片黄化突变基因的定位及候选基因分析 | 第23-28页 |
| 3.1 试验方法与数据分析 | 第23-24页 |
| 3.1.1 突变体遗传分析 | 第23页 |
| 3.1.2 定位群体的构建 | 第23页 |
| 3.1.3 DNA提取与构建混池 | 第23页 |
| 3.1.4 候选基因预测及克隆 | 第23-24页 |
| 3.1.5 候选基因验证 | 第24页 |
| 3.2 结果与分析 | 第24-27页 |
| 3.2.1 黄化突变体遗传特性分析 | 第25页 |
| 3.2.2 黄化突变基因lcm2初步定位 | 第25-27页 |
| 3.2.3 黄化突变基因lcm2克隆测序验证 | 第27页 |
| 3.3 小结 | 第27-28页 |
| 第四章 大白菜黄化突变体与野生型叶片的转录组测序分析 | 第28-42页 |
| 4.1 试验方法与数据分析 | 第28-30页 |
| 4.1.1 样品处理与总RNA提取检测 | 第28页 |
| 4.1.2 文库构建与转录组测序 | 第28-29页 |
| 4.1.3 测序数据处理 | 第29页 |
| 4.1.4 基因表达量以及差异表达基因的分析 | 第29页 |
| 4.1.5 GO功能与KEGGPathway显著性富集分析 | 第29-30页 |
| 4.2 结果与分析 | 第30-40页 |
| 4.2.1 总RNA提取与质量检测 | 第30页 |
| 4.2.2 测序质量统计 | 第30-35页 |
| 4.2.3 基因的差异表达分析(DEGs) | 第35-36页 |
| 4.2.4 GO功能显著性富集分析 | 第36-38页 |
| 4.2.5 KEGGPathway富集分析 | 第38-40页 |
| 4.3 小结 | 第40-42页 |
| 讨论 | 第42-45页 |
| 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
