| 中文摘要 | 第6-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 绪论 | 第12-15页 |
| 第一部分 声带息肉中缺氧诱导因子1α和血管内皮生长因子的表达 | 第15-29页 |
| 引言 | 第15-16页 |
| 1.1 材料和方法 | 第16-21页 |
| 1.1.1 主要实验仪器 | 第16页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第16-17页 |
| 1.1.3 实验标本及分组 | 第17页 |
| 1.1.4 常规HE染色 | 第17-18页 |
| 1.1.5 声带息肉中HIF-1α和VEGF表达的免疫组化染色 | 第18-19页 |
| 1.1.6 Western blot | 第19-21页 |
| 1.1.7 统计分析 | 第21页 |
| 1.2 结果 | 第21-25页 |
| 1.2.1 一般资料 | 第21页 |
| 1.2.2 常规HE染色 | 第21-22页 |
| 1.2.3 声带息肉中HIF-1α和VEGF表达的免疫组化染色 | 第22-24页 |
| 1.2.4 Western blot | 第24-25页 |
| 1.3 讨论 | 第25-29页 |
| 第二部分 血管振动对血流灌注及血管通透性的影响 | 第29-42页 |
| 引言 | 第29页 |
| 2.1 材料和方法 | 第29-35页 |
| 2.1.1 主要仪器 | 第29-30页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第30页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第30页 |
| 2.1.4 振动平台的建立 | 第30-32页 |
| 2.1.5 不同振动状态兔耳血流速度的观察 | 第32-33页 |
| 2.1.6 125Hz/1mm振动下兔耳廓血管通透性的观察 | 第33-35页 |
| 2.1.6.1 动物分组及模型建立 | 第33-34页 |
| 2.1.6.2 血管通透性的观察及定量分析 | 第34-35页 |
| 2.1.7 统计分析 | 第35页 |
| 2.2 结果 | 第35-39页 |
| 2.2.1 不同振动状态兔耳血流速度的观察 | 第35-36页 |
| 2.2.2 血管通透性变化的观察及定量分析 | 第36-39页 |
| 2.3 讨论 | 第39-42页 |
| 第三部分 血管振动急慢性损伤观察 | 第42-58页 |
| 引言 | 第42页 |
| 3.1 材料和方法 | 第42-50页 |
| 3.1.1 主要仪器 | 第43页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第43页 |
| 3.1.3 实验动物 | 第43页 |
| 3.1.4 振动平台的建立 | 第43-44页 |
| 3.1.5 鼠尾中央动脉振动急性损伤观察 | 第44-47页 |
| 3.1.5.1 鼠尾中央动脉振动急性损伤模型的建立 | 第44-45页 |
| 3.1.5.2 鼠尾中央动脉振动急性损伤的透射电子显微镜下观察 | 第45-46页 |
| 3.1.5.3 鼠尾中央动脉振动急性损伤血管内皮细胞NFATc3的表达 | 第46-47页 |
| 3.1.6 鼠尾中央动脉振动慢性损伤观察 | 第47-49页 |
| 3.1.6.1 鼠尾中央动脉振动慢性损伤模型的建立 | 第47页 |
| 3.1.6.2 鼠尾中央动脉振动慢性损伤对血管直径的影响 | 第47-48页 |
| 3.1.6.3 鼠尾中央动脉振动慢性损伤HIF-2α的表达 | 第48-49页 |
| 3.1.7 统计分析 | 第49-50页 |
| 3.2 结果 | 第50-56页 |
| 3.2.1 鼠尾中央动脉振动急性损伤的透射电子显微镜下观察 | 第50-53页 |
| 3.2.2 鼠尾中央动脉振动急性损伤血管内皮细胞NFATc3的表达 | 第53-54页 |
| 3.2.3 鼠尾中央动脉振动慢性损伤对血管直径的影响 | 第54-55页 |
| 3.2.4 鼠尾中央动脉振动慢性损伤HIF-2α的表达 | 第55-56页 |
| 3.3 讨论 | 第56-58页 |
| 总结和展望 | 第58-60页 |
| 综述 | 第60-66页 |
| 参考文献 | 第66-76页 |
| 缩略词表 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 在读期间发表论文 | 第78-79页 |
| 附件：在读期间发表文章 | 第79-98页 |
