| 中文摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-7页 |
| 引言 | 第12-14页 |
| 第一部分 余甘子叶总黄酮的提取纯化 | 第14-18页 |
| 1 实验材料 | 第14页 |
| 1.1 药材 | 第14页 |
| 1.2 仪器设备 | 第14页 |
| 1.3 试剂 | 第14页 |
| 2 实验方法 | 第14-16页 |
| 2.1 余甘子叶总黄酮粗提取 | 第14-15页 |
| 2.2 余甘子叶总黄酮的纯化 | 第15页 |
| 2.3 余甘子叶总黄酮的理化鉴定 | 第15-16页 |
| 3 实验结果 | 第16页 |
| 3.1 总黄酮的分离纯化 | 第16页 |
| 3.2 总黄酮的理化鉴定结果 | 第16页 |
| 4 讨论 | 第16-18页 |
| 第二部分 余甘子叶总黄酮对肿瘤细胞增殖的影响 | 第18-29页 |
| 1 实验材料 | 第18-19页 |
| 1.1 仪器设备 | 第18页 |
| 1.2 细胞株 | 第18页 |
| 1.3 实验试剂 | 第18-19页 |
| 2 实验方法 | 第19-21页 |
| 2.1 药物溶液的制备 | 第19页 |
| 2.2 细胞培养 | 第19页 |
| 2.3 细胞传代 | 第19-20页 |
| 2.4 细胞冻存 | 第20页 |
| 2.5 SRB法检测余甘子叶总黄酮对肿瘤细胞的增值影响 | 第20-21页 |
| 2.6 SRB法测定余甘子叶总黄酮对人肝癌细胞Bel-7404 增殖的量效与时效关系 | 第21页 |
| 2.7 统计分析 | 第21页 |
| 3 结果 | 第21-27页 |
| 3.1 SRB染色法测定余甘子叶总黄酮对7种肿瘤细胞的生长抑制，结果见表 2-8 | 第21-26页 |
| 3.2 SRB法测定余甘子叶总黄酮对人肝癌细胞Bel-7404 增殖的量效与时效关系 | 第26-27页 |
| 4 讨论 | 第27-29页 |
| 第三部分 余甘子叶总黄酮体对人肝癌细胞Bel-7404 的作用 | 第29-41页 |
| 1 实验材料 | 第29-30页 |
| 1.1 仪器设备 | 第29页 |
| 1.2 实验试剂 | 第29-30页 |
| 1.3 细胞株 | 第30页 |
| 2 实验方法 | 第30-32页 |
| 2.1 IF FM HCS法检测余甘子叶总黄酮对Bel-7404 细胞DNA损伤 | 第30-31页 |
| 2.2 Hoctest33258检测[28] | 第31页 |
| 2.3 流式细胞仪检测细胞周期 | 第31-32页 |
| 2.4 Annexin V-FITC/PI法检测细胞凋亡 | 第32页 |
| 2.5 酶联免疫法检测Caspase-3 | 第32页 |
| 3 结果 | 第32-39页 |
| 3.1 IF FM HCS法检测DNA损伤结果 | 第32-33页 |
| 3.2 Hoechst33258检测细胞凋亡 | 第33-34页 |
| 3.3 流式细胞仪检测细胞周期 | 第34-36页 |
| 3.4 Annexin V-FITC/PI法检测细胞凋亡 | 第36-38页 |
| 3.5 酶联免疫法检测Caspase-3 活性结果 | 第38-39页 |
| 4 讨论 | 第39-41页 |
| 第四部分 余甘子叶总黄酮对Bel-7404 荷瘤裸鼠模型的作用 | 第41-62页 |
| 1 实验材料 | 第41-45页 |
| 1.1 细胞株 | 第41页 |
| 1.2 实验动物 | 第41页 |
| 1.3 药物 | 第41页 |
| 1.4 实验器材 | 第41-42页 |
| 1.5 试剂 | 第42-44页 |
| 1.6 相关试剂的配制 | 第44-45页 |
| 2 余甘子叶总黄酮抑制肿瘤生长的研究 | 第45-52页 |
| 2.1 Bel-7404 荷瘤裸鼠模型的建立 | 第45页 |
| 2.2 分组与给药 | 第45-46页 |
| 2.3 检测指示 | 第46-52页 |
| 3 结果 | 第52-60页 |
| 3.1 一般情况观察 | 第52-56页 |
| 3.2 免疫组化测定BAX和Bcl-2 蛋白的表达 | 第56-59页 |
| 3.3 Western blot检测Bax、Bcl-2 蛋白表达 | 第59-60页 |
| 4 讨论 | 第60-62页 |
| 展望 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-69页 |
| 综述 | 第69-78页 |
| 参考文献 | 第75-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 个人简历及攻读学位期间获得的科研成果 | 第79-80页 |
