| 摘要 | 第4-8页 |
| ABSTRACT | 第8-12页 |
| 符号说明 | 第16-17页 |
| 第一章 绪论 | 第17-46页 |
| 1.1 四氢呋喃简介 | 第17-18页 |
| 1.2 THF的毒性及环境效应 | 第18-20页 |
| 1.3 THF的广泛应用与污染现状 | 第20-21页 |
| 1.3.1 THF的广泛应用 | 第20-21页 |
| 1.3.2 THF的污染现状 | 第21页 |
| 1.4 THF的环境去除研究 | 第21-29页 |
| 1.4.1 THF物理去除法 | 第22页 |
| 1.4.2 THF化学脱除法 | 第22-23页 |
| 1.4.3 THF的生物降解 | 第23-29页 |
| 1.5 有机废气的生物净化方法 | 第29-33页 |
| 1.5.1 生物法处理VOCs的主要工艺 | 第30-32页 |
| 1.5.2 生物滴滤床的填料 | 第32-33页 |
| 1.6 优势菌株在生物滴滤中的应用 | 第33-35页 |
| 1.7 本论文的选题意义与研究内容 | 第35-37页 |
| 1.7.1 研究意义 | 第35-36页 |
| 1.7.2 研究内容 | 第36-37页 |
| 参考文献 | 第37-46页 |
| 第二章 四氢呋喃降解菌DT4的分离、鉴定和生长特性研究 | 第46-64页 |
| 2.1 材料与方法 | 第46-51页 |
| 2.1.1 菌种来源 | 第46页 |
| 2.1.2 培养基 | 第46-47页 |
| 2.1.3 试剂与仪器 | 第47-48页 |
| 2.1.4 菌株的分离纯化与鉴定 | 第48-49页 |
| 2.1.5 菌株的THF降解特性初步研究 | 第49-50页 |
| 2.1.6 菌株降解广谱性研究 | 第50页 |
| 2.1.7 连续培养 | 第50-51页 |
| 2.1.8 分析方法 | 第51页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第51-61页 |
| 2.2.1 THF降解菌的分离与鉴定 | 第51-56页 |
| 2.2.2 分离菌株对THF的降解特性初步研究 | 第56-58页 |
| 2.2.3 分离菌株的底物特异性研究 | 第58-60页 |
| 2.2.4 连续培养 | 第60-61页 |
| 2.3 本章小结 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-64页 |
| 第三章 P. OLEOVORANS DT4降解THF的途径及机理 | 第64-80页 |
| 3.1 材料与方法 | 第64-69页 |
| 3.1.1 菌种 | 第64页 |
| 3.1.2 培养基及主要溶液 | 第64页 |
| 3.1.3 降解酶定位 | 第64-65页 |
| 3.1.4 厌氧降解实验 | 第65页 |
| 3.1.5 双加氧酶特异性实验 | 第65页 |
| 3.1.6 细胞色素P-450酶的验证实验 | 第65-66页 |
| 3.1.7 半缩醛氧化活性的验证 | 第66页 |
| 3.1.8 粗酶液中蛋白质含量的测定 | 第66-67页 |
| 3.1.9 中间产物的检测 | 第67页 |
| 3.1.10 分析方法 | 第67-69页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第69-77页 |
| 3.2.1 菌株DT4降解THF的代谢中间产物检测及降解途径分析 | 第69-75页 |
| 3.2.2 P.oleovorans DT4降解THF关键酶的初步分析 | 第75-77页 |
| 3.2.2.1 降解酶位置分析 | 第75页 |
| 3.2.2.2 单加氧酶的验证 | 第75页 |
| 3.2.2.3 细胞色素P-450酶的验证 | 第75-76页 |
| 3.2.2.4 半缩醛氧化活性的验证 | 第76-77页 |
| 3.3 本章小结 | 第77页 |
| 参考文献 | 第77-80页 |
| 第四章 P. OLEOVORANS DT4降解THF的条件优化 | 第80-97页 |
| 4.1 材料与方法 | 第80-83页 |
| 4.1.1 菌株和培养基 | 第80-81页 |
| 4.1.2 单因素试验 | 第81-82页 |
| 4.1.3 中心组合设计和响应面分析 | 第82-83页 |
| 4.1.4 优化验证和序批实验 | 第83页 |
| 4.1.5 分析方法 | 第83页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第83-93页 |
| 4.2.1 不同初始pH对THF降解影响 | 第83-84页 |
| 4.2.2 温度对THF降解影响 | 第84-85页 |
| 4.2.3 不同供氧方式对THF的降解影响 | 第85-86页 |
| 4.2.4 不同氮源对THF降解影响 | 第86-87页 |
| 4.2.5 不同金属离子对THF降解影响 | 第87-88页 |
| 4.2.6 中心组合设计和响应面分析优化培养基组成 | 第88-92页 |
| 4.2.7 优化验证和序批实验 | 第92-93页 |
| 4.3 本章小结 | 第93-94页 |
| 参考文献 | 第94-97页 |
| 第五章 P.OLEOVORANS DT4降解THF和BTEX混合的研究 | 第97-111页 |
| 5.1 材料与方法 | 第97-98页 |
| 5.1.1 菌种 | 第97-98页 |
| 5.1.2 培养基 | 第98页 |
| 5.1.3 BTEX和THF共存时的降解特性研究 | 第98页 |
| 5.1.4 THF对B降解的促进机理 | 第98页 |
| 5.1.5 经THF诱导DT4降解B的延滞期探究 | 第98页 |
| 5.1.6 分析方法 | 第98页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第98-108页 |
| 5.2.1 BTEX和THF的降解特性研究 | 第98-101页 |
| 5.2.2 THF对B降解的促进机理 | 第101-102页 |
| 5.2.3 经THF诱导DT4降解B的延滞期探究 | 第102-104页 |
| 5.2.4 菌株DT4降解B的代谢中间产物检测及降解途径分析 | 第104-108页 |
| 5.3 本章小结 | 第108页 |
| 参考文献 | 第108-111页 |
| 第六章 高效菌株DT4强化生物滴滤塔降解THF及其与B的混合废气的性能研究 | 第111-147页 |
| 6.1 材料和方法 | 第112-117页 |
| 6.1.1 实验装置 | 第112-113页 |
| 6.1.2 填料选择及营养液配制 | 第113-114页 |
| 6.1.3 接种方式 | 第114页 |
| 6.1.4 分析方法 | 第114-117页 |
| 6.1.4.1 工艺参数测定 | 第114-115页 |
| 6.1.4.2 Folin-酚法测定蛋白含量 | 第115页 |
| 6.1.4.3 菌株耗氧速率测定 | 第115页 |
| 6.1.4.4 分子生物学分析方法 | 第115-117页 |
| 6.2 结果和讨论 | 第117-141页 |
| 6.2.1 挂膜启动期运行性能比较 | 第117-121页 |
| 6.2.2 稳定运行期性能比较 | 第121-131页 |
| 6.2.2.1 不同停留时间去除效率的影响 | 第121-124页 |
| 6.2.2.2 不同停留时间对THF去除负荷的影响 | 第124-126页 |
| 6.2.2.3 矿化率分析 | 第126-128页 |
| 6.2.2.4 生物量和比耗氧速率考察 | 第128-131页 |
| 6.2.3 停运恢复性能考察 | 第131-132页 |
| 6.2.4 BTF对THF和B混合废气的净化作用 | 第132-134页 |
| 6.2.5 微生物种群结构解析 | 第134-141页 |
| 6.2.5.1 基因组DNA的提取和16SrDNA V3区扩增 | 第134-135页 |
| 6.2.5.2 微生物群落分析比较 | 第135-140页 |
| 6.2.5.3 微生物种群多样性分析 | 第140-141页 |
| 6.3 本章小结 | 第141-142页 |
| 参考文献 | 第142-147页 |
| 第七章 结论与展望 | 第147-152页 |
| 7.1 结论 | 第147-149页 |
| 7.2 创新点 | 第149-150页 |
| 7.3 未来工作展望 | 第150-152页 |
| 课题来源 | 第152-153页 |
| 攻读博士学位期间发表的主要学术论文 | 第153-154页 |
| 致谢 | 第154页 |
