| 摘要 | 第10-12页 |
| ABSTRACT | 第12-14页 |
| 第一章 绪论 | 第15-65页 |
| 1.1 概述 | 第15页 |
| 1.2 植物激素的分类与性质 | 第15-18页 |
| 1.3 植物激素检测方法的研究现状与进展 | 第18-34页 |
| 1.3.1 色谱法 | 第19-21页 |
| 1.3.2 色谱-质谱联用 | 第21-24页 |
| 1.3.3 免疫分析方法 | 第24-26页 |
| 1.3.4 分子印迹技术 | 第26-28页 |
| 1.3.5 电分析方法 | 第28-32页 |
| 1.3.6 光谱学方法 | 第32页 |
| 1.3.7 其它分析方法 | 第32-34页 |
| 1.3.8 小结 | 第34页 |
| 1.4 植物激素受体的研究现状与进展 | 第34-44页 |
| 1.4.1 生长素受体 | 第35-36页 |
| 1.4.2 赤霉素受体 | 第36-38页 |
| 1.4.3 细胞分裂素受体 | 第38-39页 |
| 1.4.4 脱落酸受体 | 第39-40页 |
| 1.4.5 烯受体 | 第40-41页 |
| 1.4.6 油菜素受体 | 第41-43页 |
| 1.4.7 茉莉酸受体 | 第43-44页 |
| 1.4.8 其它激素的受体 | 第44页 |
| 1.5 本论文立题思想与主要工作 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-65页 |
| 第二章 基于CdSe/ZnS纳米晶体信号放大的磁免疫分析方法检测脱落酸 | 第65-76页 |
| 2.1 引言 | 第65页 |
| 2.2 实验部分 | 第65-67页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第65-66页 |
| 2.2.2 缓冲溶液 | 第66页 |
| 2.2.3 免疫磁球的制备 | 第66-67页 |
| 2.2.4 CdSe/ZnS-抗体复合物的制备 | 第67页 |
| 2.2.5 脱落酸磁免疫分析 | 第67页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第67-73页 |
| 2.3.1 免疫磁球和CdSe/ZnS-Ab的制备 | 第67-69页 |
| 2.3.2 实验条件优化 | 第69-71页 |
| 2.3.3 脱落酸的化学发光成像检测 | 第71-72页 |
| 2.3.4 方法的选择性 | 第72-73页 |
| 2.4 小结 | 第73页 |
| 参考文献 | 第73-76页 |
| 第三章 基于纳米金免疫比色检测脱落酸糖苷酯 | 第76-98页 |
| 3.1 引言 | 第76-77页 |
| 3.2 实验部分 | 第77-80页 |
| 3.2.1 实验试剂与材料 | 第77-78页 |
| 3.2.2 纳米金的制备 | 第78页 |
| 3.2.3 脱落酸功能化纳米金的制备 | 第78页 |
| 3.2.4 脱落酸糖苷酯的合成 | 第78-79页 |
| 3.2.5 脱落酸-载体蛋白复合物的制备 | 第79页 |
| 3.2.6 抗体诱导脱落酸功能化纳米金团聚 | 第79页 |
| 3.2.7 小角X射线散射测试 | 第79页 |
| 3.2.8 实际样品的处理 | 第79-80页 |
| 3.2.9 免疫比色分析 | 第80页 |
| 3.2.10 脱落酸糖苷酯的ELISA测定 | 第80页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第80-93页 |
| 3.3.1 纳米金的制备与功能化 | 第80-82页 |
| 3.3.2 抗体诱导脱落酸功能化纳米金团聚 | 第82-84页 |
| 3.3.3 纳米金尺寸对团聚的影响 | 第84-85页 |
| 3.3.4 SAXS研究颗粒间距 | 第85-88页 |
| 3.3.5 脱落酸糖苷酯的免疫比色检测 | 第88-91页 |
| 3.3.6 方法的选择性 | 第91-92页 |
| 3.3.7 实际样品中的应用 | 第92-93页 |
| 3.4 小结 | 第93页 |
| 参考文献 | 第93-98页 |
| 第四章 基于量子点-石墨烯FRET免疫荧光检测脱落酸糖苷酯 | 第98-116页 |
| 4.1 引言 | 第98-99页 |
| 4.2 实验部分 | 第99-101页 |
| 4.2.0 实验试剂与材料 | 第99页 |
| 4.2.1 油溶性量子点的相转换 | 第99-100页 |
| 4.2.2 肽包覆量子点表面配体覆盖率测定 | 第100页 |
| 4.2.3 活细胞共聚焦荧光成像 | 第100页 |
| 4.2.4 肽包覆量子点的细胞毒性测试 | 第100-101页 |
| 4.2.5 水溶性石墨烯的制备 | 第101页 |
| 4.2.6 制备抗体标记的还原型氧化石墨烯 | 第101页 |
| 4.2.7 基于FRET检测脱落酸糖苷酯 | 第101页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第101-111页 |
| 4.3.1 油溶性量子点的配体交换 | 第101-104页 |
| 4.3.2 肽包覆量子点在溶液中的胶体稳定性 | 第104-105页 |
| 4.3.3 肽包覆量子点的光物理性质 | 第105-107页 |
| 4.3.4 肽包覆量子点在生命科学中的潜在应用 | 第107-109页 |
| 4.3.5 肽包覆量子点的功能化及其在植物激素检测中的应用 | 第109-111页 |
| 4.4 小结 | 第111页 |
| 参考文献 | 第111-116页 |
| 第五章 植物激素均相免疫分析方法的信号放大技术初探 | 第116-127页 |
| 5.1 引言 | 第116-117页 |
| 5.2 实验部分 | 第117-118页 |
| 5.2.1 实验试剂与材料 | 第117页 |
| 5.2.2 琼脂糖凝胶电泳 | 第117页 |
| 5.2.3 “turn-off”和“turn-on”模式检测生物素-SA相互作用 | 第117-118页 |
| 5.2.4 生物素-SA相互作用的超灵敏测定 | 第118页 |
| 5.2.5 检测生物素-抗体相互作用 | 第118页 |
| 5.3 实验结果与讨论 | 第118-124页 |
| 5.4 小结 | 第124页 |
| 参考文献 | 第124-127页 |
| 第六章 脱落酸受体的磁分离分析研究 | 第127-147页 |
| 6.1 引言 | 第127-128页 |
| 6.2 实验部分 | 第128-131页 |
| 6.2.1 实验试剂与材料 | 第128页 |
| 6.2.2 生物素酰肼衍生化ABA(1,Bio-ABA)的合成与表征 | 第128-129页 |
| 6.2.3 生物素胺己酰肼衍生化ABA(2,Bio-LC-ABA)的合成与表征 | 第129页 |
| 6.2.4 卵清蛋白-脱落酸复合物(OVA-ABA,3)的合成 | 第129页 |
| 6.2.5 磁分离探针的制备 | 第129-130页 |
| 6.2.6 脱落酸受体PYR1的表达与纯化 | 第130页 |
| 6.2.7 FITC标记PYR1(FITC-PYR1)的制备 | 第130页 |
| 6.2.8 植物组织蛋白的提取 | 第130-131页 |
| 6.2.9 脱落酸受体的磁分离 | 第131页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第131-141页 |
| 6.3.1 亲和配体的制备 | 第131-132页 |
| 6.3.2 亲和配体与脱落酸受体PYR1的作用 | 第132-134页 |
| 6.3.3 磁分离探针的优化 | 第134-135页 |
| 6.3.4 脱落酸受体PYR1的磁分离 | 第135-137页 |
| 6.3.5 实际样品中脱落酸受体的磁分离分析 | 第137-141页 |
| 6.4 小结 | 第141页 |
| 参考文献 | 第141-147页 |
| 总结与展望 | 第147-149页 |
| 附录1: 英文缩写与中英文全称对照表 | 第149-156页 |
| 附录2: 攻博期间已发表和待发表的文章 | 第156-158页 |
| 致谢 | 第158页 |
